Extrait aqueux de Cistanche Tubulosa sur le microbiote intestinal de souris atteintes de troubles intestinaux

1. Introduction

Les micro-organismes intestinaux colonisent principalement la lumière intestinale et la couche muqueuse et se mutualisent avec l'hôte par le biais d'échanges de matière et d'énergie, de transformation et d'autres processus [1]. Ce sont des centres de signalisation qui intègrent des messages environnementaux, tels que l'alimentation, avec des signaux génétiques et immunitaires, affectant ainsi le métabolisme, l'immunité, le système nerveux et la réponse aux infections de l'hôte [2]. Normalement, il existe un équilibre dynamique entre la flore intestinale et les hôtes ; cependant, la dysbiose intestinale peut entraîner des modifications de l’équilibre santé/maladie, des troubles immunitaires et une multitude de maladies [3]. Des changements modérés dans le microbiote intestinal sont acceptables pour l’hôte ; cependant, cela peut encore offrir la possibilité d'amplifier les changements d'autres facteurs aggravants, tels que les bactériophages, les bactériocines et le stress oxydatif [4].

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Des études antérieures ont montré quel'extrait éthanolique de Cistanche tubulosa(CT), une formule traditionnelle chinoise à base de plantes, peut réguler la composition microbienne intestinale chez le rat [5], et les glycosides totaux de CT ajustent le microbiote intestinal désordonné [6]. Les espèces de Cistanche, qui parasitent principalement les racines des espèces de Tamarix, sont également appelées « ginseng du désert », et un tonique constitué des tiges de Cistanche deserticola (CD) et de Cistanche tubulosa (CT) est utilisé comme remède à base de plantes [7 ]. Il a été démontré que les principaux composants chimiques des glycosides de phényléthanol (PHG) CT, qui sont des substances antioxydantes [8, 9], améliorent le dysfonctionnement de la reproduction [10], suppriment l'activation des cellules étoilées hépatiques et bloquent la conduction des voies de signalisation dans le TGF{{6} }/ SMAD [11], et préviennent la fibrose hépatique induite par l'albumine sérique bovine chez le rat [12]. Parmi plus de 100 composants du CT, le polysaccharide est également l'une des substances importantes à teneur abondante [13, 14]. Des études antérieures ont démontré que les polysaccharides de C. deserticola induisent la mélanogenèse dans les mélanocytes, réduisent le stress oxydatif [15], atténuent le dysfonctionnement cognitif en régulant les processus antioxydants et anti-inflammatoires chez le rat [16], protègent les cellules PC12 contre les blessures induites par les OGD/RP [17 ],améliorer l'absorption de l'échinacoside in vivo, et affectent le microbiote intestinal [18].

Les probiotiques sont des micro-organismes vivants non pathogènes qui présentent des avantages pour la santé et confèrent un équilibre microbien dans le tractus gastro-intestinal lorsqu'ils sont administrés en quantités adéquates (19). Ils peuvent améliorer les réponses immunitaires cellulaires non spécifiques caractérisées par l’activation des macrophages, des cellules tueuses naturelles (NK) et des lymphocytes T cytotoxiques spécifiques de l’antigène et par la libération de diverses cytokines de manière spécifique à la souche et dépendante de la dose (20). Les souches probiotiques améliorent les propriétés de l'épithélium intestinal via la modulation TJ, et il a été démontré que des souches probiotiques spécifiques régulent l'expression de la mucine, influençant ainsi les propriétés de la couche de mucus et régulant indirectement le système immunitaire intestinal (21). Les souches de bactéries lactiques (LAB) et de Bifidobacterium sont des probiotiques majeurs utilisés dans de nombreux domaines [22-26]. Leurs bienfaits pour la santé sont nombreux, leur capacité antioxydante étant un facteur important dans leurs fonctions liées à la santé [27]. Les probiotiques peuvent chélater les ions métalliques pour les empêcher de catalyser l’oxydation [28, 29] ; ils peuvent également augmenter l'expression d'enzymes antioxydantes [30, 31], produire divers métabolites ayant une activité antioxydante [32, 33], médier les voies de signalisation des antioxydants [34-36] et réguler les enzymes produisant des espèces réactives de l'oxygène (ROS) et le réponse des micro-organismes intestinaux au stress oxydatif [37].

Une étude récente a démontré que les polysaccharides de la CD pourraientstimuler la croissance de certaines bactéries lactiques, ce qui pourrait être bénéfique pour la santé humaine [38]. Cependant, la teneur en polysaccharides du CD est différente de celle du CT [7, 39], et cette différence peut conduire à des effets différents sur les micro-organismes intestinaux. De plus, bien que les polysaccharides CD puissent réduire le stress oxydatif en activant la voie NRF2/HO-1 [15], les effets d'un seul polysaccharide peuvent différer de l'effet global de plusieurs compositions en CT. Ainsi, il est nécessaire de définir précisément les effets des extraits aqueux de CT sur les micro-organismes intestinaux. De plus, les PHG peuvent également résister au stress oxydatif [40] et supprimer les réponses inflammatoires médiées par les lipopolysaccharides en activant la voie Keap1/Nrf2/HO-1 [41]. Par conséquent, la détermination de l’effet de l’extrait aqueux CT est d’une grande valeur. De plus, les effets de certains constituants de l’extrait aqueux de CD sur le stress oxydatif et la flore intestinale suggèrent que la résistance au stress oxydatif pourrait être corrélée à des modifications de la flore intestinale.

Pour combler les lacunes dans les connaissances sur les sujets évoqués ci-dessus, nous avons étudié les effets de l’extrait aqueux CT sur le microbiote intestinal de souris présentant des troubles de la flore intestinale.ÈmeCes résultats fourniront des informations précieuses sur les mécanismes possibles par lesquels la tomodensitométrie modifie la flore intestinale et confère une résistance intestinale au stress oxydatif.

2. Matériels et méthodes

2.1. Animaux expérimentaux.

Au total, 18 souris mâles C57BL/6J de classe SPF, pesant entre 18 et 22 g, ont été achetées au Centre animalier expérimental de l'Université médicale du Xinjiang sous le numéro de licence SCXK (nouveau) 2018-0003. Ils ont été hébergés dans des cages dans des conditions standardisées : photopériode lumière/obscurité de 12 h, température de 23 ± 2 degrés et humidité de 55 ± 5 %. Les animaux ont été nourris avec un régime commercial (51 % d'extrait sans azote, 25 % de protéines brutes, 4,6 % de matières grasses brutes, 6,5 % de cendres brutes, 4,0 % de fibres brutes et 8,9 % d'humidité) et de l'eau du robinet. Les animaux ont été traités conformément aux recommandations décrites dans le Guide pour le soin et l'utilisation des animaux de laboratoire des National Institutes of Health.

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2.2. Extraction de l'extrait aqueux.

Des tranches séchées de C. tubulosa, fournies par Hotan Dichen Pharmaceutical Biotechnology Co., Ltd., ont été broyées en poudre et des granulés dont la taille des particules était comprise entre 2{{10}} et 40 mailles ont été choisi. Les conditions d'extraction étaient les suivantes : rapport solide-liquide de 1:19, température de 80 degrés, temps de micro-ondes de 6 min, temps d'ultrasons de 16 min, puissance de micro-ondes de 400 W et puissance d'ultrasons de 400 W. les teneurs des principaux composants de l'extrait aqueux ont été mesurées par HPLC (Agilent 1260 Infinity II, Californie, USA). En bref, les substances standard d’échinacoside (0,2 mg/mL) et d’acteoside (0,2 mg/mL) ont été dissoutes dans du méthanol à 50 % pour servir de solution de substance de référence. Ensuite, 1 g de l’extrait aqueux CT a été dissous dans 100 ml de méthanol à 50 % et laissé reposer pendant 30 min. La solution d'extrait a été traitée aux ultrasons à 250 W et 35 kHz pendant 10 min, puis centrifugée à 12,000 tr/min/min. Le surnageant a été filtré sur une membrane filtrante microporeuse de 0,45 µm. La solution de substance de référence et le filtrat ont ensuite été détectés par HPLC dans les conditions suivantes : gel de silice lié à l'octadécylsilane comme charge, méthanol comme phase mobile A et 0,1 % d'acide formique comme phase mobile B. La température de la colonne a été fixée à 30 °C. degré, la longueur d'onde de détection a été fixée à 330 nm et le volume d'injection était de 10 μL.

2.3. Expériences.

Après une semaine d'adaptation, les 18 souris ont été réparties aléatoirement en six groupes : A (normales avec extrait aqueux CT à dose moyenne ajouté), B (normales sans extrait aqueux CT), C (modèle sans extrait aqueux), D ( modèle avec extrait aqueux CT à haute dose ajouté), E (modèle avec extrait aqueux CT à dose moyenne ajouté) et F (modèle avec extrait aqueux CT à faible dose ajouté). Les groupes ont été traités comme suit : le groupe normal a été trempé dans une solution saline normale, le groupe modèle a été trempé dans du céfixime (30 mg/kg, Shiyao Group Ouyi Pharmaceutical Co., Ltd., Shijiazhuang, Chine) et une solution saline normale, à haute concentration. Le groupe à dose moyenne a été trempé par du céfixime et 221,14 mg/kg d'extrait aqueux CT, le groupe à dose moyenne a été trempé par du céfixime et 165,54 mg/kg d'extrait aqueux, et le groupe à faible dose a été trempé par du céfixime et 110,57 mg/kg. de l'extrait aqueux. Le groupe A a été trempé avec 165,54 mg/kg d'extrait aqueux et aucun céfixime n'a été ajouté. Le céfixime a été administré quotidiennement à midi et les autres substances ont été administrées quotidiennement à 15 : 00 h. Au cours des expériences, les groupes C, D, E et F ont été maintenus dans l’état modèle des troubles intestinaux. Les matières fécales ont été collectées tous les sept jours sur une table opérationnelle stérile et stockées à −20 degrés.

2.4. Observation histopathologique du côlon de souris.

À la fin de l'expérience, les souris ont été tuées par luxation cervicale et le contenu de leur côlon a été collecté sur une table opérationnelle stérile et stocké à -80 degrés C ; parallèlement, des échantillons de tissus coliques ont été fixés dans du formol neutre à 10 %. Ensuite, les échantillons ont été déshydratés à l’aide d’un gradient de concentration d’éthanol, hyalinisés à l’aide de xylène, inclus dans de la paraffine, sectionnés et colorés à l’hématoxyline-éosine. Les changements morphologiques de la muqueuse colique ont été observés et comparés à l'aide d'un microscope optique. La longueur des villosités et la profondeur des cryptes dans le côlon ont été mesurées et le rapport entre la longueur des villosités et la profondeur des cryptes (valeur V/C) a été calculé (51).

2.5. Extraction d'ADN et construction de bibliothèques.

L'ADN a été extrait des matières fécales à l'aide du kit EZNA ®Soil DNA (Omega Bio-Tek, Norcross, GA, USA) conformément au protocole du fabricant. La qualité de l'ADN a été déterminée à l'aide d'un fluoromètre (QuantiFluor ™ – ST, Promega Corporation, USA). Des amorces appariées dans la région V3-V4 de l'ADNr 16s ont été conçues pour amplifier la région et produire des fragments d'ADN de 466 pb. L'amorce directe était 341F (-5- CCTACGGGNGGCWGCAG-3-) et l'amorce inverse était 806R (-5-GGACTACHVGGGTATTCTAAT-3-). Chaque volume de PCR était de 25 μL, contenant 2,5 μL de tampon PCR 10 ×, 2 μL de dNTP, 1 μL de chaque amorce et 20 à 30 ng d'ADN matrice. Ensuite, les adaptateurs indexés ont été attachés à l’extrémité des amplicons pour générer des bibliothèques de séquençage. Les bibliothèques ont été validées à l'aide d'un fluoromètre QuantiFluor™ et quantifiées à 10 nmol.

2.6. Séquençage des gènes de l’ARNr 16s et analyse de la communauté microbienne.

La plate-forme Illumina (Illumina MiSeq) a été utilisée pour obtenir des données appariées de 2 × 250 pb. Les unités taxonomiques opérationnelles (OTU) ont été obtenues à l'aide du logiciel Uparse via un clustering standard avec une similarité de 97 %. L'algorithme d'affectation bayésien naïf du classificateur RDP a été utilisé pour aligner les OTU avec la base de données Greengene version 13.5 et effectuer l'annotation des espèces. La diversité alpha du microbiote intestinal a été calculée à l'aide des indices de Shannon et Simpson, et les différences entre les groupes ont été analysées par analyse discriminante linéaire Effect Size (LEfSe). La diversité bêta a été analysée par analyse des coordonnées principales (PCoA) des dissimilarités Bray – Curtis. PICRUSt2 a été utilisé pour estimer la capacité métabolique microbienne du microbiome intestinal (42).

2.7. Analyse des données statistiques.

SPSS 20 a été utilisé pour l'ANOVA unidirectionnelle et les données expérimentales ont été exprimées sous la forme X ± S ; X indique la valeur moyenne et S indique l'écart type.

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3. Résultats

3.1. 8e Effet de l'extrait aqueux CT sur la morphologie du côlon.

Les composés représentatifs (échinacoside et actéoside) et leurs concentrations de l'extrait CT ont été validées par HPLC (Figure S1). Pour déterminer l'effet de l'extrait aqueux sur l'intestin, nous avons étudié la longueur des villosités du côlon et la profondeur des évidements après le traitement avec l'extrait aqueux CT. Les villosités du côlon dans les groupes à dose normale et élevée (A, B et D) étaient plus longues et ressemblaient à des doigts, tandis que les villosités du côlon dans les groupes modèle et à faible dose (C et F) étaient courtes et les extrémités du côlon les villosités étaient cassées (Figure 1). En conséquence, l'extrait aqueux CT à haute dose a augmenté de manière significative la longueur des villosités du côlon et réduit la profondeur du récessus chez les souris souffrant de troubles intestinaux par rapport aux souris du groupe modèle (P < 0.01). En revanche, la profondeur du récessus n'était pas significativement différente entre le groupe à dose élevée et le groupe normal (P > 0,05) (Tableau S1). Ces résultats indiquent que la dose élevée d’extrait aqueux CT peut améliorer la morphologie à l’intérieur du côlon des souris souffrant de troubles intestinaux.

3.2. 8e Effet de l'extrait aqueux CT sur la diversité du microbiote intestinal.

Nous avons effectué le séquençage du gène de l'ARNr 16s pour étudier la cause potentielle des changements morphologiques à l'intérieur du côlon et étudier les changements dans le microbiote intestinal après un traitement avec l'extrait aqueux CT. Une moyenne de 100 553 balises efficaces, allant de 77 734 à 125 144, ont été obtenues à partir des données brutes (tableau S2). Ces balises ont été regroupées en 4932 OTU (tableau S3). Nous avons ensuite analysé la diversité du microbiote intestinal à partir de ces OTU. Les indices de Shannon et Simpson n'ont montré aucune différence entre le groupe A (normal avec l'extrait aqueux CT) et le groupe B (normal sans l'extrait aqueux CT) (Figure 2 (a)). Cela indique que, chez les souris sans traitement au céfixime, l’extrait aqueux CT pourrait n’avoir eu aucun effet bénéfique ou nocif supplémentaire sur la diversité du microbiote intestinal. Cependant, la diversité dans le groupe modèle (C) a montré une tendance à la baisse par rapport à celle des groupes normaux. Les souris traitées avec des extraits aqueux CT à dose élevée et moyenne ont montré des signes de récupération de la diversité, alors qu'un tel phénomène n'a pas été observé chez les souris traitées avec l'extrait aqueux CT à faible dose (Figure 2 (a)). Parallèlement, le PCoA a révélé que les groupes normaux (A et B) et les groupes souffrant de troubles intestinaux ayant reçu des extraits aqueux CT à forte dose (D) et à dose moyenne (E) avaient tendance à avoir des distances inter-échantillons plus courtes que celles du groupe modèle et du groupe témoin. Groupe de supplément d'extrait aqueux CT à faible dose (F) (Figure 2 (b)). Ces résultats ont indiqué que l'extrait aqueux CT pourrait aideraméliorer la diversité du microbiote intestinalchez les souris souffrant de troubles intestinaux.

3.3. Modifications de la composition du microbiote intestinal traité avec l'extrait aqueux CT.

Les profils de composition du microbiote ont été comparés entre différents groupes. Au niveau du phylum, l'abondance relative des protéobactéries dans le groupe modèle était supérieure à celle des autres groupes (Figure 3 (a)). L'augmentation du nombre de protéobactéries suggère que le microbiome des souris modèles a été modifié par le céfixime et que l'extrait aqueux de CT pourrait bénéficier au microbiote intestinal, car la prévalence accrue de protéobactéries est un marqueur central d'une flore intestinale désordonnée (43-45). De plus, au niveau du genre, l'abondance relative de Lactobacillus dans le groupe modèle a diminué par rapport à celle des groupes à dose normale et élevée ; cependant, il a augmenté par rapport à celui du groupe recevant les doses moyennes et faibles (Figure 3 (b)). Ces résultats indiquent que l’extrait aqueux CT à haute dose pourrait favoriser la croissance de certaines bactéries du genre Lactobacillus.

Les microbiotes différentiels entre les groupes étudiés ont ensuite été déterminés selon l’analyse LEfSe. Cette analyse a montré qu'après le traitement au céfixime, les abondances relatives de Turicibacter, Alphaproteobacteria, Acidobacteria, Betaproteobacteriales et Chloroflexi ont augmenté de manière significative, tandis que les abondances relatives de Lactobacillus, Eubacterium_nodatum_groupe, Pseudonocardiales et le groupe Christensenellaceae_R-7_ ont diminué de manière significative par rapport à ceux du groupe normal (Figure 4(a)). Étonnamment, lorsque le groupe modèle a été complété avec l'extrait aqueux CT à haute dose, les abondances relatives de Muribaculaceae, Lactobacillus, Kineosporiaceae, Eubacterium nodatum et Pedobacter ont été significativement augmentées par rapport à celles du groupe modèle. Pendant ce temps, les abondances relatives de Rhodobacter, Ruminococcaceae UCG_013, Roseburia, Ruminiclostridium_9 et Candidatus Stoquefichus ont diminué de manière significative par rapport à celles du groupe modèle (Figure 4(b)).

3.4. Fonctions du microbiote intestinal liées au traitement par l'extrait aqueux CT.

Nous avons utilisé le logiciel PICRUSt2 pour prédire les voies métaboliques du microbiote intestinal, et le groupe normal a été utilisé comme référence pour analyser les changements dans d'autres groupes. Sous le traitement au céfixime, l'abondance relative de la dégradation de l'éthylbenzène, la biosynthèse des peptides non ribosomiques du groupe sidérophore et le métabolisme des xénobiotiques par les voies du cytochrome P450 ont augmenté ; après le traitement avec des extraits aqueux CT à doses élevées et moyennes, leur abondance relative est revenue à des niveaux normaux. Pendant ce temps, l’abondance relative de la voie métabolique des acides cyanoaminés a diminué sous le traitement au céfixime ; cependant, il a augmenté après le traitement avec l'extrait aqueux CT à haute dose. De plus, en général, les changements dans les différentes voies métabolites après le traitement par le céfixime étaient significatifs par rapport à ceux du groupe normal ; cependant, l’ajout de l’extrait aqueux CT a permis d’éviter des changements excessifs (Figure 5).

4. Discussion

La morphologie du côlon peut être modifiée par la croissance, la digestion et l'absorption, la régulation immunitaire et la réparation des lésions intestinales [46-50]. Le rapport V/C peut refléter globalement l’état digestif du tractus intestinal et est directement proportionnel à la capacité digestive et d’absorption du tractus intestinal [51, 52]. Dans la présente étude, la biopsie des villosités et des récessus et les données statistiques ont montré que l'extrait aqueux à forte dose pouvait améliorer en partie la morphologie défectueuse à l'intérieur du côlon.

Pour étudier comment l’extrait aqueux modifie la morphologie intestinale et affecte le microbiote intestinal, nous avons travaillé à rebours sur les modifications de la flore intestinale. Nous avons constaté que l'abondance relative des protéobactéries, un marqueur central de la flore intestinale désordonnée, augmentait sous le traitement au céfixime par rapport à celle sans traitement au céfixime. Les abondances relatives d'autres marqueurs centraux, Bacteroidetes et Firmicutes, n'ont pas connu de changements significatifs, bien que ceux-ci

les groupes sont prédominants dans l’intestin humain ; il a été constaté que le rapport Bacteroidetes/Firmicutes était diminué chez les personnes obèses par rapport à celui des personnes maigres, et ce rapport augmentait avec la perte de poids chez les personnes suivant deux types de régimes hypocaloriques [38, 41, 43-45, 48, 53, 54]. Pendant ce temps, Turicibacter, qui est associé à l’obésité [55], était significativement plus élevé dans le groupe modèle que dans les autres groupes. Notamment, la diversité du microbiote intestinal chez les souris modèles a été améliorée par l’ajout de l’extrait aqueux CT. Nous avons noté certaines bactéries intestinales spécifiques chez des souris soumises à différents traitements ; par exemple, Lactobacillus et Muribaculaceae étaient les deux principaux genres bactériens qui ont augmenté dans le groupe traité avec l'extrait aqueux CT à haute dose par rapport à ceux du groupe modèle (Figure 4). Des études récentes ont indiqué que les polysaccharides des extraits aqueux CT possèdent une

croissance de certaines bactéries lactiques, ce qui pourrait être bénéfique pour la santé de l'hôte [43]. En parallèle, les Muribaculaceae sont des organismes probiotiques liés à la longévité [57].ÈmeCes résultats suggèrent que le mécanisme par lequel l’extrait aqueux CT améliore le microbiote intestinal pourrait être la promotion ou la protection de la croissance d’organismes probiotiques. Une autre bactérie digne de mention était la bactérie YE57. Bien que l'extrait aqueux CT à haute dose ait favorisé l'abondance relative de la bactérie YE57 dans la présente étude (Figure 4), des études antérieures ont montré que son abondance était plus élevée dans l'intestin normal que dans l'intestin traité avec des résidus de tisane à haute concentration. [58] et que son abondance a été réduite après l'intervention avec Bacillus licheniformis associé à XOS (xylooligosaccharides) [59].ÈmePour nous, le rôle de cette bactérie dans le microbiote intestinal mérite une étude plus approfondie. En outre, le nombre relativement faible d’échantillons dans cette étude pourrait entraîner une mesure de faux positifs et de faux négatifs, et une étude future sur des échantillons plus grands est suggérée pour valider les marqueurs bactériens identifiés.

La composition de l'extrait aqueux de CT pourrait être importante pour ses effets sur la composition et les modifications fonctionnelles du microbiote intestinal des souris souffrant de troubles intestinaux. Les PHG sont des composants actifs courants trouvés dans la MC et la CT, et l'échinacoside a été identifié comme le principal PHG dans la CT (60). Au cours des dernières décennies, il a été démontré que l'échinacoside possède de nombreuses activités pharmacologiques, telles que des effets anti-âge et neuroprotecteurs, l'amélioration de la fonction cardiaque, la réduction de l'hyperlipidémie et de l'hyperglycémie, ainsi que la prévention du diabète et du syndrome métabolique induits par l'obésité (53, 61-65). . Nous avons détecté des changements dans les voies métaboliques du microbiote intestinal.ÈmeLe traitement au céfixime a conduit à l'enrichissement des bactéries liées à la dégradation de l'éthylbenzène et à la biosynthèse des peptides non ribosomiques du groupe sidérophore, tandis que les traitements avec l'extrait aqueux CT à dose élevée et moyenne pourraient atténuer ces changements, indiquant que cet extrait a modéré la communauté bactérienne liée. à ces fonctions. De plus, l'enrichissement bactérien accru lié à la voie du métabolisme des acides cyanoaminés sous le traitement avec l'extrait aqueux à forte dose et son enrichissement diminué chez les souris modèles ont indiqué que l'extrait aqueux CT peut favoriser le métabolisme des acides aminés cyano.ÈmeLes changements dans les métabolites pertinents pourraient conférer à cet extrait aqueux des activités pharmacologiques.

Bien que le mécanisme par lequel l’extrait aqueux de CT modifie la composition et la fonction du microbiote intestinal soit complexe, il existe quelques indices permettant de spéculer sur le mécanisme potentiel. Il a été rapporté que les bactéries lactiques et les extraits aqueux CT peuvent contrarier le stress oxydatif. Le stress oxydatif survenant lors d’une inflammation est un facteur courant qui exacerbe les troubles intestinaux en réduisant fortement la diversité microbienne intestinale et en favorisant la montée de bactéries spécifiques (4). Au contraire, les espèces réactives de l’oxygène favorisent également la croissance sélective de groupes bactériens par la respiration des nitrates et des tétrathionates [66-68] ; par exemple, les bactéries de la famille des Enterobacteriaceae peuvent se développer rapidement en raison de modifications de la composition de la flore intestinale dans des conditions oxydatives lors d'une inflammation [69, 70]. La plupart des organismes vivants développent des défenses enzymatiques, des défenses antioxydantes non enzymatiques et des mécanismes de réparation pour éliminer les radicaux oxygénés (71). Cependant, ces systèmes antioxydants natifs ne suffisent généralement pas à prévenir les dommages oxydatifs chez les organismes vivants. Plusieurs autres antioxydants synthétiques, notamment l'hydroxyanisole butylé et l'hydroxytoluène butylé, ont été largement utilisés pour diminuer l'oxydation, mais leur sécurité a été remise en question (72, 73). Par conséquent, les chercheurs se sont tournés vers la recherche d’antioxydants plus sûrs et plus naturels obtenus à partir de substances naturelles. En raison de la capacité des polysaccharides et des bactéries lactiques à éliminer le stress oxydatif, la détermination du mécanisme antioxydant précis des extraits aqueux de CT sur le microbiote intestinal nécessite des recherches plus approfondies à l'avenir.

En conclusion, nous avons constaté que l’extrait aqueux CT était capable deaméliorer le microbiote intestinalchez les souris souffrant de troubles intestinaux en favorisant la diversité,modérer les changements métaboliques, et le remodelage de la structure du microbiote intestinal, et ces résultats pourraient servir de référence pour le développement de médicaments associés à l'avenir.

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