Comparaison de la teneur en glycosides de phényléthanol dans deux cistanches hôtes différents Herba après différents traitements de séchage Ⅱ

2.6 Revue méthodologique

2.6.1 Test de précision

Prenez la solution de référence mélangée, injectez et mesurez en continu 6 fois selon les conditions « 2.2 » et « 2.3 ». Calculeréchinacoside,verbascoside,anthocynoside A, jardiniposide, et 2'-acétyleL'écart type relatif (RSD) des zones de pic du verbascoside, du salidroside, de l'agripaume,cistancheside A, ettubuline Bétaient {{0}},98 %, 0,68 %, 0,91 %, 0,49 %, {{10} },77 % et 0,79 respectivement. %, 0,84 %, 0,69 %, 0,54 %, 0,62 %, indiquant que l'instrument a une bonne précision.

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2.6.2 Essai de stabilité

Aspirez de mêmeCistanche désertiquetester la solution et injecter des échantillons pour la mesure à {{0}}, 2, 4, 6, 8, 10, 12 et 24 heures selon les conditions indiquées sous « 2.2 » et « 2.3 ». ". Calculez le RSD de la zone de pic des composants ci-dessus comme suit : 0,28 %, 0,43 %, 0,75 %, 1,14 %, 0,89 %, 1,07 %, 1,23 % et 1,01 % , indiquant que l'instrument a une bonne précision.

2.6.3 Test de répétabilité

Prélever 6 portions du même lot d'échantillon d'essai, peser chaque portion à 1,0 g, préparer la solution d'essai selon la méthode sous "2.5", injecter et mesurer selon les conditions sous "2.2" et " 2,3", et calculez le contenu des 1{{10}} ingrédients ci-dessus. Les RSD sont 0,41 %, 0,27 %, 0,49 %, {{20}},36 %, 0. 57 %, 0,97 %, 0,24 %, 0,61 %, 0,32 % et 0,63 % respectivement, ce qui indique que la méthode a une bonne répétabilité.

2.6.4 Test de récupération des échantillons

Prenez la solution de test qui a été analysée et testée pour le contenu de10 glycosides phényléthanoïdes, et ajoutez 50 % de la solution mère de substance de référence qui est la même que la10 glycosides phényléthanoïdesdans l'échantillon (la concentration massique de chaque composant est de 100 ug/L). %, 100 %, 150 %, selon les conditions de « 2,2 » et « 2,3 », le taux de récupération de l'échantillon des 10 composants ci-dessus est calculé comme étant de 100,21 % ~ 107,92 %, et le RSD est de 0,03 % ~ 1,09 %, voir le tableau 3. On peut voir que la précision de cette méthode est bonne.

Tableau 3 Récupérations et RSD de dix glycosides phényléthanoïdes

Tableau 6 Traitement standardisé des données de test

3 Résultats et analyse

3.1 Analyse de la variance de l'échantillon

SPSS 20.0.0 a été utilisé, spécifiant 5 méthodes de séchage comme variables indépendantes et la teneur en 10 glycosides de phényléthanol comme variables dépendantes, et a effectué une analyse de variance à un facteur (voir Tableau 4 et Tableau 5). Les résultats de l'analyse montrent que les principaux composants chimiques de Cistanches deserticola et de Haloxylon ammodendron sont les mêmes, mais les différences de teneur sont importantes. De plus, à l’exception des verbascosides, différents traitements de séchage ont des effets différents sur chaque glycoside de phényléthanol détecté. Il existe des différences significatives (P < 0,05) entre les différentes composantes. Parmi eux, parmi les hôtes Cistanche deserticola, les fleurs séchées au soleilCistanche désertiquea la plus forte teneur en gardéniposide, et la Cistanche deserticola séchée à 80 degrés a la plus forte teneur en gardéniposide et en agripaume. Les teneurs en sedum et en cistanche A sont les plus élevées, et la cistanche lyophilisée a les teneurs les plus élevées en échinacoside, transcode A, verbascoside, isocarbastoside, transcode B et 2'-acétyl verbascoside ; dans Haloxylon ammo dendron Parmi les hôtes Cistanche deserticola, le Cistanche deserticola séché au soleil a la teneur en génocide la plus élevée, le processus de séchage à 80 degrés a la teneur la plus élevée en échinacoside et en cistancheaside A, et le processus de lyophilisation a la teneur la plus élevée en salidroside et en tubéreuse. UN.,Verbascoside, anthophyllite B, isorébascoside et 2'-acétyleverbascosideont le contenu le plus élevé.

3.2 Traitement et analyse de la normalisation des échantillons

Pour expliquer de manière plus scientifique et intuitive les effets des différentes méthodes de séchage sur la teneur en glycosides de 10 phényléthanol chez Cistanches deserticola sur différents hôtes, les données de traitement standardisées du score Z dans SPSS 20.0.0 ont été utilisées. (Tableau 6). Il ressort du score global de la teneur en glycosides phényléthanoïdes de Cistanche deserticola, l'hôte de Chenopodium, qui était la plus élevée après lyophilisation, suivie d'un séchage à 80 degrés. Le score global des glycosides phényléthanoïdes chez Cistanche deserticola, l'hôte de Haloxylon ammodendron, était le plus élevé après lyophilisation, suivie d'un séchage à 80 degrés. Traitement à sec. Cela reflète également que la teneur totale en 10 glycosides de phényléthanoïde dans la Cistanche deserticola des deux hôtes était la plus élevée après lyophilisation, suivie d'un séchage à 80 degrés.

4 Conclusion et discussion

Cette étude a établi une méthode d'analyse et de détection simultanées de l'agripaume, du salidroside, du gardeniposide, de l'échinacée,cistanche glycoside Aet fleur en tube à l'aide d'une spectrométrie de masse en tandem par chromatographie liquide à ultra haute performance et triple quadripôle (UPLC-QQQ-MS). Méthodes pour le glycoside A, le verbascoside, l'isorbascoside, l'anorthosite B et le 2'-acétyl verbascoside. Après avoir ajouté du méthanol, une extraction par ultrasons a été réalisée et une analyse de réactions multiples a été réalisée avec un spectromètre de masse triple quadripôle en mode ions négatifs par pulvérisation d'électrons. Cette méthode peut analyser rapidement, précisément et facilement10 composants glycosides phényléthanoïdes de Cistanche deserticoladans différents hôtes, et a une sensibilité et une résolution élevées.

Après avoir analysé les résultats à l'aide de différentes méthodes statistiques, on peut constater que différentes méthodes de traitement de séchage ont un impact significatif sur la teneur en 10 glycosides de phényléthanol de Cistanche deserticola sur différents hôtes. La teneur totale des 10 glycosides de phényléthanol détectés dans cette expérience était la plus élevée dans les échantillons lyophilisés des deux hôtes Cistanche deserticola, suivis par les échantillons séchés à 80 degrés, mais la teneur en phényléthanol dans les échantillons obtenus en séchant les deux hôtes Cistanche deserticola dans les mêmes conditions était la plus élevée. Il existe également des différences significatives dans la teneur en glycosides. De haut en bas, la teneur totale est la suivante : Échantillon lyophilisé d'hôte Atriplex truncatula Cistanche deserticola > Échantillon de séchage à 80 degrés d'hôte Atriplex truncatula Cistanche deserticola > Hôte Haloxylon ammodendron Échantillon lyophilisé de Cistanche deserticola > Haloxylon ammodendron Échantillons d'hôte Cistanche deserticola ont été séchées à 80 degrés. Huang Xiang[17],

Wang Limin [18], Feng Jie [19] et d'autres études ont montré que l'hôte Haloxylon ammodendron Cistanche deserticola contient la plus grande quantité d'ingrédients actifs retenus après lyophilisation et séchage à 80 degrés, et la teneur en ingrédients actifs dans différents hôtes. de Cistanche deserticola présente des différences significatives, parmi lesquelles quatre. La teneur en glycosides de phényléthanol dans le matériel médicinal d'Atriplexa parasitica et de Cistanche deserticola est généralement supérieure à celle de Haloxylon ammodendron. Cependant, les composants détectés dans la littérature sont concentrés dans l'échinacéaside, le verbascoside, le cistancheoside A, l'isomurabasine et le 2'-acétyl verbascoside, les résultats obtenus dans cette expérience sont cohérents avec la littérature, et une détection plus poussée de la teneur en glycosides de phényléthanol a été ajouté, renforçant encore l’exactitude et la base théorique des conclusions expérimentales.

Dans le "Pharmacopée chinoise" (édition 2020),verbascosideetéchinacéesont répertoriés comme composants d'index de Cistanche deserticola. Sur la base de tous les résultats d'analyse, il est démontré que les échantillons de Cistanche deserticola des deux hôtes après lyophilisation et séchage à 80 degrés sont tous identiques. Elle présente des avantages évidents par rapport aux autres méthodes de séchage. La lyophilisation prend 2 à 3 fois plus de temps qu'un séchage à 80 degrés. Dans l'expérience, la Cistanche deserticola a été découpée en tranches de 3 mm d'épaisseur pour être séchée, ce qui est souvent le cas lors de la transformation industrielle en usine. La Cistanche deserticola entière est séchée, la différence entre le temps de lyophilisation et de séchage peut donc être supérieure à la durée expérimentale. De plus, il existe un processus de durcissement avant le séchage, qui ralentit la perte d'ingrédients médicinaux en détruisant l'activité enzymatique [11]. Avant la lyophilisation, il est nécessaire de

Les échantillons frais sont pré-refroidis dans un réfrigérateur à -80 degrés pendant un certain temps sans tuer ni détruire l'activité enzymatique. Lorsque Cistanche deserticola est stockée en grande quantité pendant la période de récolte, le problème de la faible efficacité de lyophilisation affectera grandement la qualité des matières médicinales. Par conséquent, en termes de consommation de temps et de rétention des ingrédients, le coût mécanique et les difficultés de fonctionnement ne sont pas propices à une production à grande échelle, le séchage à 80 degrés est donc plus économique. Cette expérience fournit uniquement des suggestions pour les méthodes de séchage de deux hôtes Cistanche deserticola du point de vue de la teneur en glycosides de phényléthanol et fournit une certaine référence théorique pour le traitement des matières médicinales de Cistanche deserticola et le contrôle qualité des aliments associés. Des mises à jour ultérieures seront effectuées sur les aspects pharmacologiques et d’efficacité. Recherche approfondie.

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