Abstrait

Cistanche désertiqueLe Ma, communément appelé « ginseng du désert », est une plante médicinale parasitaire précieuse largement répandue dans le nord-ouest de la Chine. Ses composants polysaccharidiques représentent l’une des substances bioactives les plus vitales avec des fonctions anti-âge, immunomodulatrices et antioxydantes. Dans cette étude, trois approches d'extraction, dont l'extraction à l'eau chaude, l'extraction enzymatique et l'extraction assistée par ultrasons, ont été comparées pour le rendement en polysaccharides deCistanche désertique. Des expériences à facteur unique combinées à la méthodologie de surface de réponse Box-Behnken ont été appliquées pour optimiser les paramètres d'extraction assistée par ultrasons, avec le rapport solide-liquide, le temps d'extraction par ultrasons et la température ultrasonique comme variables indépendantes. La capacité antioxydante in vitro des polysaccharides obtenus a été caractérisée par des tests de suppression des radicaux DPPH et ABTS, en utilisant la vitamine C (Vc) comme contrôle positif. Les résultats ont démontré que l’extraction assistée par ultrasons offrait le rendement en polysaccharides le plus élevé parmi les trois techniques testées. Les conditions optimales étaient un rapport solide-liquide de 1:100 (5,0 g de poudre brute dans 500 ml d'eau distillée), un temps d'extraction par ultrasons de 40 minutes et une température d'extraction de 48 degrés, ce qui donnait un taux d'extraction des polysaccharides de 7,49 %. Dans ces conditions optimisées, l’activité de suppression des radicaux DPPH deCistanche désertiqueles polysaccharides ont atteint 84,27 % de l'activité Vc et la capacité de piégeage des radicaux ABTS représentait 73,95 % par rapport à Vc. Cette recherche fournit une référence expérimentale pour la production et l’application à grande échelle deCistanche désertiquepolysaccharides dans les industries des aliments fonctionnels, des nutraceutiques et des soins de santé.

Mots-clés: Cistanche désertique; ginseng du désert; polysaccharide végétal; extraction assistée par ultrasons; méthodologie de la surface de réponse ; DPPH ; ABTS ; activité antioxydante; ingrédient fonctionnel naturel

1. Introduction

Cistanche désertiqueMa est une plante holoparasite vivace qui prospère dans les régions désertiques du Xinjiang, de la Mongolie intérieure et de la province chinoise du Gansu. Depuis des milliers d'années dans la médecine traditionnelle chinoise, il est réputé comme « ginseng du désert » pour tonifier l'essence des reins, détendre la fonction intestinale et retarder la sénescence. Dans la recherche nutritionnelle et pharmacologique moderne, les constituants bioactifs deCistanche désertique, en particulier les polysaccharides, les composés phénoliques, les flavonoïdes et les alcaloïdes, ont suscité un intérêt croissant de la part des chercheurs mondiaux pour les matières premières antioxydantes naturelles destinées au développement d'aliments fonctionnels.

Les polysaccharides sont des macromolécules de haut poids moléculaire polymérisées à partir d'unités monosaccharides reliées par des liaisons glycosidiques.Cistanche désertiqueles polysaccharides possèdent une large distribution de poids moléculaire allant de dizaines de milliers à des millions de Daltons et sont constitués de glucose, de galactose, de mannose et d'autres résidus monosaccharides. Les structures de ramification complexes contribuent à leurs caractéristiques physico-chimiques et à leurs performances biologiques uniques. Outre les polysaccharides, l'herbe brute contient également de nombreux acides aminés essentiels, des acides gras insaturés et des oligo-éléments tels que le zinc, le sélénium et le cuivre, qui soutiennent le métabolisme physiologique humain et l'homéostasie immunitaire. Composés antioxydants endogènes dansCistanche désertiquecomprennent la catéchine, l'acide gallique, la quercétine, le kaempférol, la bétaïne et les alcaloïdes cistanche. Ces substances éliminent les espèces réactives de l’oxygène et limitent la peroxydation lipidique pour atténuer les dommages oxydatifs. Il convient de noter que l’efficacité des antioxydants est fortement affectée par le flux de travail d’extraction, les formes existantes de biomolécules et les effets d’interaction des composés entre différents composés phytochimiques.

La technologie d’extraction est une étape décisive pour récupérer les composés actifs d’origine végétale. Les stratégies d'extraction courantes à l'échelle des laboratoires industriels pour les polysaccharides botaniques comprennent l'extraction à l'eau chaude, l'extraction alcoolique, l'extraction assistée par ultrasons, l'extraction assistée par micro-ondes et l'extraction par fluide supercritique. Chaque méthode présente des avantages et des inconvénients distincts. L'extraction à l'eau chaude est peu coûteuse et conviviale pour la fabrication de masse, mais elle donne généralement un rendement modéré et co-extrait des impuretés considérables. Les protocoles à base d'alcool favorisent les métabolites lipophiles mais ne conviennent pas aux polysaccharides hydrosolubles et comportent des risques liés aux solvants organiques. L'extraction assistée par ultrasons utilise des effets de cavitation mécanique pour perturber les parois cellulaires végétales, accélérant ainsi le transfert de masse des substances intracellulaires dans un solvant aqueux. Il présente une durée de traitement plus courte et un rendement d'extraction amélioré ; néanmoins, une intensité ultrasonique élevée ou une température excessive peuvent dégrader les biocomposants sensibles à la chaleur et nécessitent un investissement en capital plus élevé pour l'équipement. L'extraction par fluide supercritique permet d'obtenir des extraits sans solvant d'une grande pureté, mais souffre de seuils de fonctionnement compliqués et d'investissements en instruments coûteux.

Bien que plusieurs enquêtes aient porté surCistanche désertiquel’extraction des polysaccharides et la bioactivité, l’évaluation comparative systématique des flux de travail à l’eau chaude, enzymatiques et assistés par ultrasons reste limitée. Ce travail a été conçu pour comparer les rendements en polysaccharides de trois protocoles d'extraction représentatifs, optimiser les conditions assistées par ultrasons par criblage à un seul facteur et modélisation de la surface de réponse, et quantifier les profils antioxydants in vitro des produits polysaccharidiques purifiés. L'objectif était d'établir des paramètres de traitement pratiques pour maximiser la récupération des polysaccharides tout en conservant le pouvoir antioxydant. Les résultats peuvent soutenir une exploitation plus poussée deCistanche désertiqueen tant que ressource médicinale comestible pour les marchés mondiaux des aliments fonctionnels et offre une référence méthodologique pour l'optimisation des processus de produits naturels.

2. Matériels et méthodes

2.1 Matières premières et réactifs chimiques

Blocs de tubercules séchés deCistanche désertiqueont été achetés auprès d'un fournisseur local d'herbes chinoises dans la ville de Baise. La préparation du composé cellulase-pectinase et la solution tampon phosphate ont été obtenues auprès de Guangzhou Kangzhongyang Biotechnology Co., Ltd. Le sel de diammonium de qualité analytique 1,1-diphényl-2-picrylhydrazyl (DPPH), 2,2′-azino-bis-(acide 3-éthylbenzothiazoline-6-sulfonique) (ABTS) a été fourni par Shanghai Dongfulong Bio-Reagent Co., Ltd. D'autres produits chimiques, notamment le phénol, l'acide sulfurique concentré, L'éthanol à 95 % était de qualité analytique.

2.2 Instruments et appareils

Balance analytique CG‑01, pulvérisateur à grande vitesse 6800, trancheuse RQ‑100, bain-marie thermostatique TWS‑1000 ; Évaporateur rotatif WH50, extracteur à ultrasons SG30‑01A (350 W, 40 kHz) ; Spectrophotomètre UV‑Vis UAR‑2000, centrifugeuse THQ‑03, lyophilisateur BTS‑31E.

2.3 Préparation des échantillons

SéchéCistanche désertiqueles tubercules ont été lavés avec de l'eau ultrapure et séchés au four à 40 degrés jusqu'à ce que l'humidité de la surface soit éliminée. Le matériau a été tranché à une épaisseur de 0,3 mm, pulvérisé et tamisé à travers un tamis de 100 mesh pour obtenir une poudre homogène pour les tests d'extraction ultérieurs.

2.4 Trois protocoles d'extraction de polysaccharides

2.4.1 Extraction d'eau chaude

5.0 g Cistanche désertiquela poudre a été transférée dans un bécher de 1 000 ml mélangé à 500 ml d'eau distillée. L'extraction au bain-marie a été maintenue pendant 2 heures à une température inférieure à 100 degrés. Une agitation manuelle a été réalisée toutes les 100 minutes pour mettre en suspension les précipités et faciliter la dissolution des polysaccharides. Le mélange a été refroidi à température ambiante, centrifugé à 4 000 tr/min pendant 10 min pour recueillir le fluide surnageant. Le surnageant a été concentré sous pression réduite à 40 degrés à l'aide d'un évaporateur rotatif jusqu'à un volume de 20 ml. . 60 ml d'éthanol à 95 % ont été ajoutés pour la précipitation de l'alcool et laissés au repos toute la nuit. Le précipité a été recueilli après centrifugation (3 000 tr/min, 10 min), lyophilisé par lyophilisateur pour acquérir une poudre brute de polysaccharide.

2.4.2 Extraction enzymatique

5,0 g de poudre d'échantillon ont été dispersés dans 500 ml de solution tampon composée de cellulase-pectinase (pH 5,0). L'hydrolyse enzymatique s'est déroulée dans un bain-marie à 45 degrés pendant 5 h. La fin de la réaction a été réalisée en chauffant la solution jusqu'à 100 degrés pendant 10 minutes pour inactiver la protéine enzymatique. Après refroidissement, le liquide a été centrifugé (4 000 tr/min, 10 min). Le surnageant a été concentré sous vide à 20 ml, mélangé à de l'éthanol à 95 % pour une précipitation pendant une nuit. Les étapes de centrifugation et de lyophilisation étaient identiques à la procédure à l’eau chaude pour récolter le polysaccharide brut.

2.4.3 Extraction assistée par ultrasons

5.0 g Cistanche désertiquela poudre a été mélangée à 500 ml d’eau distillée. Une suspension homogène a été placée à l’intérieur d’un extracteur à ultrasons réglé sur une puissance de 350 W et une fréquence de 40 kHz. Après le traitement ultrasonique programmé, l’échantillon liquide s’est refroidi naturellement. Les étapes de centrifugation, d’évaporation rotative, de précipitation à l’éthanol et de lyophilisation ont suivi le flux de travail cohérent mentionné ci-dessus pour produire des extraits bruts de polysaccharides.
 

2.5 Détermination du rendement d’extraction des polysaccharides

La teneur totale en glucides a été quantifiée par dosage à l'acide phénol-sulfurique en faisant référence à la méthode modifiée décrite dans la littérature publiée. Les solutions étalons de glucose ont été configurées selon des gradients de concentration en série . 1 mL de réactif phénol à 10 % plus 3 mL d'acide sulfurique concentré ont été mélangés à des solutions étalons. La réaction a été incubée à 85 degrés pendant 15 minutes, la valeur d'absorbance a été lue à une longueur d'onde de 540 nm pour tracer la courbe d'étalonnage. Équation de régression : \\(y=9.6959x+0.0077\\), coefficient de détermination \\(R^2=0.999\\).

Des échantillons bruts de polysaccharides (0,1 g) ont été dissous dans 100 ml d'eau distillée. L'aliquote a été analysée sous une réaction identique phénol-acide sulfurique. Le rendement en polysaccharides (%) a été calculé par la formule (1) :

\\(Rendement(\\%)=\\frac{C\\times V\\times n}{M}\\times100\\% \\tag{1}\\)

Où : concentration en polysaccharide C= (g/mL) ; V=volume de solution échantillon ; n=multiple de dilution ; M=poids brutCistanche désertiquepoudre (g).

2.6 Plan expérimental à facteur unique pour l’extraction assistée par ultrasons

Trois variables d'influence majeures ont été étudiées : le rapport solide-liquide, la durée de l'extraction par ultrasons et la température des ultrasons. Le rendement en polysaccharides a servi d'indicateur d'évaluation. Gradient du rapport solide-liquide : 1:400, 1:200, 1:100, 1:50 ; gradient de temps ultrasonique : 10 min, 20 min, 30 min, 40 min, 50 min ; gradient de température : 37 degrés, 43 degrés, 48 ​​degrés, 53 degrés. Chaque groupe a été réalisé en triple.

2.7 Méthodologie de surface de réponse (conception Box-Behnken)

Sur la base des résultats de tests à un seul facteur, un schéma de surface de réponse Box-Behnken à trois facteurs et trois niveaux a été construit. Le facteur A représentait le rapport solide-liquide ; Le facteur B correspondait au temps d'extraction par ultrasons ; Le facteur C représentait la température ultrasonique. Le rendement d'extraction des polysaccharides a été défini comme valeur de réponse Y. L'ajustement du modèle de régression et l'analyse de la variance ont été effectués pour examiner les paramètres d'extraction optimaux.

2.8 Évaluation de l'activité antioxydante in vitro

Des solutions d’échantillons de polysaccharides bruts ont été préparées dans la plage de concentrations : 0,1 mg/mL à 0,7 mg/mL. La solution de vitamine C (Vc) a servi de groupe témoin de référence en antioxydants positifs.

2.8.1 Mesure de l'activité de piégeage des radicaux DPPH

2 mL de solution échantillon de polysaccharide ont réagi avec 1,5 mL de solution de travail d’éthanol anhydre DPPH. Le liquide mélangé a été incubé dans un environnement sombre pendant 40 minutes. L'absorbance \\(A_i\\) a été détectée à une longueur d'onde de 517 nm. \\(A_j\\) désigne l'absorbance du groupe témoin avec Vc ; \\(A_0\\) représentait l'absorbance du groupe blanc lorsque l'eau distillée remplaçait l'échantillon liquide. Le taux de piégeage des radicaux DPPH (%) a été calculé via la formule (2) :

\\(DPPH\\ radical\\ piégeage\\ taux(\\%)=\\frac{A_0-(A_i-A_j)}{A_0}\\times100\\% \\tag{2}\\)

2.8.2 Test d'activité de piégeage des radicaux ABTS

Le liquide de travail ABTS était une solution d'échantillon de polysaccharide de . 2 ml fraîchement préparée mélangée à 4 ml de réactif ABTS, incubée dans l'obscurité pendant 15 min. La lecture de l'absorbance a été enregistrée à 752 nm. \\(A_i\\), \\(A_j\\), \\(A_0\\) correspondent respectivement au groupe d'échantillon, au groupe de contrôle positif et au groupe de contrôle à blanc. Le taux de piégeage des radicaux ABTS (%) a été calculé par la formule (3) :

\\(ABTS\\ radical\\ piégeage\\ taux(\\%)=\\frac{A_0-(A_i-A_j)}{A_0}\\times100\\% \\tag{3}\\)

2.9 Analyse statistique

Tous les essais expérimentaux ont été répétés trois fois. Le traitement des données, l'analyse de régression et l'analyse de variance ont été effectués par un logiciel statistique. Un tracé graphique a été réalisé pour une comparaison visuelle des groupes expérimentaux.

3. Résultats et discussion

3.1 Comparaison du rendement d’extraction des polysaccharides pour trois technologies d’extraction

L'extraction à l'eau chaude, l'extraction enzymatique et l'extraction assistée par ultrasons ont été mises en œuvre selon des flux de travail standard respectifs. Des différences significatives existaient dans les rendements finaux en polysaccharides. L'extraction à l'eau chaude a donné le rendement le plus faible ; l'extraction enzymatique a produit une récupération modérée ; L'extraction assistée par ultrasons a obtenu le rendement le plus élevé de (7,27 ± 0,04) %. Étant donné que les étapes de concentration post-extraction, de précipitation et de lyophilisation étaient identiques pour trois lots, la divergence de rendement provenait directement des distinctions des mécanismes d'extraction.

L’extraction à l’eau chaude repose uniquement sur la dissolution aqueuse thermique. Certaines fractions de polysaccharides de poids moléculaire élevé présentent une solubilité limitée dans l'eau dans des conditions de chauffage à pression atmosphérique, ce qui entraîne une libération incomplète des tissus végétaux. L'extraction enzymatique dégrade les constituants de la cellulose et de la pectine dans les parois cellulaires avec un composé hydrolase pour faciliter la libération de la substance active. Cependant, le système enzymatique complexe présente une efficacité d’hydrolyse limitée pour les autres composants de la matrice cellulaire, ce qui limite la production totale de polysaccharides. La force de cavitation ultrasonique choque et fracture continuellementCistanche désertiquestructure de la paroi cellulaire, élargissant la zone de contact solvant-solide et accélérant l'efficacité du transfert de masse des molécules de polysaccharides intracellulaires en phase aqueuse. Par conséquent, l’extraction assistée par ultrasons a remarquablement amélioré l’efficacité de la récupération des polysaccharides. Selon ces résultats comparatifs, l’extraction assistée par ultrasons a été sélectionnée pour une étude ultérieure d’optimisation du processus.

3.2 Résultats des tests à un seul facteur pour l'extraction assistée par ultrasons

3.2.1 Effet du rapport solide-liquide sur le rendement en polysaccharides

Le rapport solide-liquide détermine la force motrice du gradient de concentration entre l’intérieur de la cellule végétale et le solvant aqueux externe. Avec l’augmentation de la proportion de liquide, le rendement d’extraction des polysaccharides a d’abord augmenté puis diminué. At solid‑liquid ratio 1:100 (5 g powder added to 500 mL distilled water), yield peaked at 7.46 %. Lorsque le volume de solvant était insuffisant (rapport solide-liquide 1:50), la capacité du solvant devenait saturée, limitant la dissolution des polysaccharides. Un rapport de solvant trop élevé (1:200, 1:400) diluerait la concentration du soluté et augmenterait la charge de travail pour une concentration sous vide ultérieure sans amélioration supplémentaire du rendement. Ainsi, le rapport solide-liquide 1:100 a été choisi comme niveau central pour la conception de la surface de réponse.

3.2.2 Influence du temps d'extraction par ultrasons sur les performances d'extraction

Le rendement en polysaccharides a augmenté de manière continue avec l'extension du temps de traitement par ultrasons dans les 30 minutes. Après plus de 30 minutes, la tendance à la croissance des rendements s’est aplatie. La courte durée des ultrasons ne peut pas fournir une énergie de cavitation mécanique adéquate pour briser complètement les barrières des parois cellulaires. Une fois la rupture de la paroi cellulaire saturée, la prolongation du temps de traitement par ultrasons pourrait difficilement favoriser la libération des polysaccharides. Une exposition excessivement longue aux ultrasons peut potentiellement déclencher une dégradation partielle des chaînes macromoléculaires des polysaccharides. Par conséquent, 30 minutes ont été sélectionnées comme niveau central de référence pour la conception de la surface de réponse.

3.2.3 Impact de la température d'extraction par ultrasons

Le rendement d'extraction des polysaccharides a augmenté à mesure que la température augmentait jusqu'à 53 degrés. Une fois que la température dépassait 55 degrés, le rendement diminuait fortement. Un chauffage modéré améliore le taux de diffusion moléculaire et la solubilité dans l’eau du polysaccharide. Néanmoins, des conditions thermiques élevées déclencheront une dégradation thermique des macromolécules polysaccharidiques, brisant les liaisons glycosidiques et détruisant les composants cibles, entraînant une diminution du rendement mesurable. Sur la base de la tendance de réponse à un seul facteur, un intervalle de température de 48 à 53 degrés a été adopté pour une optimisation multifactorielle plus poussée.

3.3 Analyse d'optimisation de la surface de réponse

Le plan expérimental de surface de réponse Box-Behnken a été exécuté en prenant le rapport solide-liquide (A), le temps ultrasonique (B), la température ultrasonique (C) comme variables indépendantes et le rendement en polysaccharides comme réponse Y. L'équation de régression quadratique multiple a été ajustée comme suit :

\\(Y=7.120-0.065A+0.280B-0,210C+0.390AB+0.04AC+0.072BC-0,190A^2-0,860B^2-0,075C^2\\)

Variance‑analysis outcomes illustrated that overall regression model reached extremely significant level (\(P=0.0003\)). The lack‑of‑fit term showed non‑significant difference (\(P=0.0592>0,05\\)), démontrant un bon degré d'ajustement entre l'équation de régression et les données expérimentales réelles. Le coefficient de détermination ajusté \\(R^2_{Adj}=0.9232\\), prouvant que plus de 92 % de variation du rendement en polysaccharides peut être interprété par ce modèle mathématique.

Comparaison de signification des facteurs : le temps d'extraction par ultrasons (B) a exercé une influence extrêmement significative sur le rendement (\\(P=0.0035\\) ); la température ultrasonique (C) a produit un impact significatif (\\(P=0.0256\\) ); Le rapport solide-liquide (A) a montré un effet non significatif (\\(P=0.3938\\)). Ordre de priorité des facteurs d'influence : temps d'extraction par ultrasons > température d'extraction par ultrasons > rapport solide-liquide. Le terme d'interaction AB (rapport solide-liquide × temps ultrasonique) a permis d'obtenir un effet d'interaction extrêmement significatif.

À partir d'essais expérimentaux de matrice de surface de réponse, un rendement maximal mesuré en polysaccharides de 7,49 % est apparu dans des conditions : rapport solide-liquide 1 : 100, temps d'extraction par ultrasons 40 min, température d'extraction par ultrasons 48 degrés. Cet ensemble de paramètres a été confirmé comme étant la condition optimale d’extraction assistée par ultrasons pourCistanche désertiquepolysaccharides.

3.4 Évaluation de l’activité antioxydante des polysaccharides extraits de manière optimale

Sous des paramètres optimaux d’extraction assistée par ultrasons, la capacité d’élimination des radicaux in vitro deCistanche désertiqueles polysaccharides ont été mesurés avec Vc comme référence de référence positive. La capacité de piégeage des radicaux DPPH de l'échantillon de polysaccharide a atteint 84,27 % par rapport aux performances de piégeage du Vc ; son activité de suppression des radicaux ABTS représentait 73,95 % par rapport au standard Vc. DPPH et ABTS sont deux systèmes classiques complémentaires d’évaluation des antioxydants in vitro, reflétant la capacité d’élimination des radicaux libres envers différentes espèces de radicaux. Les données de test ont vérifié queCistanche désertiquele polysaccharide possède un potentiel antioxydant important.

Le mécanisme antioxydant des polysaccharides végétaux est généralement associé à des groupes hydroxyles répartis sur les branches de la chaîne sucrée. Les groupements hydroxyle donnent des protons d'hydrogène pour neutraliser les radicaux libres et mettre fin à la réaction radicalaire en chaîne. De plus, les impuretés polyphénoliques et flavonoïdes résiduelles co-extraites dans la poudre brute de polysaccharide peuvent générer un effet antioxydant synergique. Il convient de noter que les paramètres technologiques d’extraction pourraient modifier la répartition du poids moléculaire des polysaccharides et la teneur en composants mineurs coexistants, modifiant ainsi davantage le pouvoir antioxydant final. Le flux de travail optimisé assisté par ultrasons a non seulement maximisé le rendement en polysaccharides, mais a également réservé une activité antioxydante relativement élevée aux extraits.

3.5 Discussion approfondie

Par rapport à l’extraction conventionnelle à l’eau chaude et à l’extraction enzymatique, l’extraction assistée par ultrasons combine une perturbation physique par cavitation mécanique avec une dissolution par solvant aqueux. Il permet d'obtenir un rendement plus élevé en polysaccharides sans grande consommation de préparation enzymatique. Selon les résultats de l’analyse de variance, le temps de traitement par ultrasons était la variable la plus dominante. Une durée insuffisante des ultrasons limite la fragmentation de la paroi cellulaire ; un temps excessif peut entraîner une dégradation des biomolécules. La température doit être strictement contrôlée en dessous du seuil de dégradation thermique des substances polysaccharidiques. Le rapport solide-liquide affecte principalement l'équilibre de dissolution et le coût énergétique du post-traitement ; dans un intervalle raisonnable, son influence est relativement plus faible que le temps et la température.

Le polysaccharide brut obtenu présente une forte capacité d'élimination des radicaux libres in vitro, ce qui conforte ses perspectives de développement en tant que matière première antioxydante naturelle remplaçant les antioxydants synthétiques partiels dans les formules alimentaires fonctionnelles. Cette étude n’a évalué que le polysaccharide brut. Les recherches futures pourront se concentrer sur la purification des polysaccharides, l’analyse de la composition des monosaccharides, la caractérisation du poids moléculaire et la validation des antioxydants au niveau cellulaire ou sur modèle animal. En outre, des recherches plus approfondies pourraient explorer la relation de compromis entre le rendement d’extraction et l’activité biologique ; certains paramètres d’extraction rigoureux à haut rendement pourraient nuire à la bioactivité, même en augmentant la production de masse brute.

4. Conclusion

Dans cette recherche, trois workflows d'extraction pourCistanche désertiqueles polysaccharides ont été systématiquement comparés. L’extraction assistée par ultrasons a surpassé l’extraction à l’eau chaude et l’extraction enzymatique en ce qui concerne le taux de récupération des polysaccharides. Le criblage à un seul facteur combiné à la méthodologie de surface de réponse Box-Behnken a déterminé les paramètres optimaux d'extraction assistée par ultrasons : rapport solide-liquide 1:100 (5,0 gCistanche désertiquepoudre mélangée à 500 ml d'eau distillée), temps d'extraction par ultrasons 40 min, température d'extraction 48 degrés. Dans ces paramètres optimisés, le rendement d’extraction des polysaccharides a atteint 7,49 %. La détection de l'activité antioxydante a indiqué que l'activité de suppression des radicaux DPPH des extraits de polysaccharides atteignait 84,27 % de la performance de la vitamine C ; La capacité de piégeage des radicaux ABTS était équivalente à 73,95 % de Vc.

La présente étude fournit des paramètres de traitement pratiques pour la production assistée par ultrasons deCistanche désertiquepolysaccharides. Les résultats expérimentaux valident que les polysaccharides deCistanche désertiquepossèdent une bioactivité antioxydante considérable. Les résultats jettent les bases expérimentales d’une utilisation ultérieure deCistanche désertiquecomme matière première fonctionnelle naturelle dans les secteurs mondiaux des nutraceutiques, des compléments alimentaires et des aliments fonctionnels.

Références

[1] Liu ZX, Li BB, Zhao Y et al. Préparation et stabilité de l'émulsion de resvératrol Pickering stabilisée par la protéine de noix /Cistanche désertiquepolysaccharide[J]. Science des aliments, 2024, 45(23) : 2328‑2334. [2] Ma JC, Li XP, Gong Y F. Optimisation du traitement des boissons composées avec de la confiture de rose etCistanche désertiquepar la méthodologie de la surface de réponse [J]. Condiment de Chine, 2024, 49(11):102‑109. [3] Shu WL, Ye Y, Meng W D. Optimisation de la préparation et analyse des composants de l'originalCistanche désertiqueliquide oral[J]. Recherche et développement alimentaires, 2024, 45(19):132‑139. [4] Liu W H. Étude sur l'extraction et l'activité antioxydante de l'huile volatile deCistanche désertiquepar distillation à la vapeur par relargage assisté par ultrasons[J]. Industrie chimique de Guangzhou, 2024,52(15):46‑50,58. [5] Xiang S Q. Analyse des composants nutritionnels et recherche sur l’activité antioxydante desCistanche désertique[J]. Journal of Food Safety Review, 2024(12) : 96‑98. [6] Chen Y, Song ZP, Wu H. Optimisation du processus d'extraction et analyse de l'activité antioxydante des polysaccharides dePéristrophe bivalvis[J]. Science et technologie de l'industrie alimentaire, 2023, 44(5):166‑173.