Vue d'ensemble des constituants des phlorotanins dans les fucales Partie 4
Jul 03, 2023
6. Remarques finales
En résumé, les Fucales comprennent un vaste groupe d'espèces d'algues avec une variabilité significative en termes de composés de phlorotanins. Les dosages spectrophotométriques peuvent être un outil utile pour le criblage à haut débit, facile et rentable des teneurs en phlorotanins. Cependant, pour séparer, quantifier et caractériser ces composés, des techniques analytiques robustes sont essentielles. Actuellement, la SM couplée à la HPLC offre une approche satisfaisante pour la séparation et la caractérisation des phlorotanins oligomères. Des améliorations significatives ont également été apportées avec le développement d'équipements plus spécialisés, tels que l'UHPLC et le HRMS. Cependant, lorsque des détails complets sur les positions de liaison et les formes isomériques sont nécessaires, seule la RMN peut offrir cette capacité.
Le glycoside de cistanche peut également augmenter l'activité de la SOD dans les tissus cardiaques et hépatiques et réduire considérablement la teneur en lipofuscine et en MDA dans chaque tissu, piégeant efficacement divers radicaux réactifs de l'oxygène (OH-, H₂O₂, etc.) et protégeant contre les dommages à l'ADN causés par des radicaux OH. Les glycosides phényléthanoïdes de Cistanche ont une forte capacité de piégeage des radicaux libres, une capacité de réduction supérieure à la vitamine C, améliorent l'activité de la SOD dans la suspension de sperme, réduisent la teneur en MDA et ont un certain effet protecteur sur la fonction de la membrane du sperme. Les polysaccharides Cistanche peuvent améliorer l'activité de la SOD et du GSH-Px dans les érythrocytes et les tissus pulmonaires de souris sénescentes expérimentalement causées par le D-galactose, ainsi que réduire la teneur en MDA et en collagène dans les poumons et le plasma et augmenter la teneur en élastine, ont un bon effet de piégeage sur le DPPH, prolonge le temps d'hypoxie chez les souris sénescentes, améliore l'activité de la SOD dans le sérum et retarde la dégénérescence physiologique du poumon chez les souris expérimentalement sénescentes Avec la dégénérescence morphologique cellulaire, des expériences ont montré que Cistanche a la bonne capacité antioxydante et a le potentiel d'être un médicament pour prévenir et traiter les maladies du vieillissement cutané. Dans le même temps, l'échinacoside dans Cistanche a une capacité significative à piéger les radicaux libres DPPH et a la capacité de piéger les espèces réactives de l'oxygène et d'empêcher la dégradation du collagène induite par les radicaux libres, et a également un bon effet réparateur sur les dommages anioniques des radicaux libres thymine.


Néanmoins, cet équipement n'est pas le plus abordable/accessible pour les laboratoires. La disponibilité de plus de composés standard pourrait contribuer à une meilleure utilisation de la HPLC car elle générerait des bibliothèques fiables pour la comparaison. Alternativement, pour étudier et identifier les composés PT communs par spectroscopie RMN, les lier aux temps de rétention HPLC et aux données spectrales UV pourrait représenter une autre avancée pour la communauté des chercheurs.
Contributions d'auteur:Conceptualisation—MDC et SMC ; revue de la littérature et rédaction du projet original—MDC, SMGP, SS, FC, SSB, DCGAP, AMSS, SMC Tous les auteurs ont contribué à la rédaction—révision et édition. Tous les auteurs ont lu et accepté la version publiée du manuscrit.

Financement: Ce travail a reçu le soutien financier des fonds nationaux PT (FCT/MCTES, Fundação para a Ciência e Tecnologia et Ministério da Ciência, Tecnologia e Ensino Superior) à travers les projets UIDB/50006/2020 et UIDP/50006/2020. Grâce à PTDC/BAA-AGR/31015/2017, "Algaphlor—Phlorotanins d'algues brunes : de la biodisponibilité au développement de nouveaux aliments fonctionnels", cofinancé par le Programme opérationnel pour la compétitivité et l'internationalisation—POCI, au sein du Fonds européen de développement régional (FEDER), et la Fondation pour la science et la technologie (FCT), par le biais de fonds nationaux. Silva S. remercie FCT pour le financement par le biais du programme DL 57/2016–Norma transitória (Réf. SFRH/BPD/74299/2010).
Les conflits d'intérêts:Les auteurs ne déclarent aucun conflit d'intérêt.
Les références
1. Cho, GY ; Rousseau, F.; de Reviers, B.; Bouh, SM ; Reviers, BDE; Cho, GY; Rousseau, F.; Reviers, BDE Relations phylogénétiques au sein des fucales (Phaeophyceae) évaluées par le photosystème I codant les séquences PsaA. Phycologie 2006, 45, 512–519. [Référence croisée]
2. Baweja, P. ; Kumar, S.; Sahoo, D.; Levine, I. Biologie des algues. In Algues dans la santé et la prévention des maladies ; Elsevier : Amsterdam, Pays-Bas, 2016 ; p. 41–106.
3. Bermejo, R. ; Chefaoui, RM; Engelen, AH; Buonomo, R.; Neiva, J.; Ferreira-Costa, J.; Pearson, Géorgie ; Marbà, N.; Duarte, CM; Airoldi, L.; et coll. Les forêts marines du complexe méditerranéen-atlantique de Cystoseira tamariscifolia montrent un hotspot génétique ibérique du sud et aucun isolement reproductif en parapatrie. Sci. Rep. 2018, 8, 10427. [CrossRef] [PubMed]
4. Montero, L. ; Herrero, M.; Ibañez, E.; Iba, I. ; Ibañez, I. ; Cifuentes, A. Séparation et caractérisation des phlorotannins des algues brunes Cystoseira abies-marina par chromatographie liquide bidimensionnelle complète. Électrophorèse 2014, 35, 1644–1651. [Référence croisée] [PubMed]
5. Jégou, C.; Connan, S.; Bihannic, I.; Cérantola, S.; Guérard, F.; Stiger-Pouvreau, V. Teneur en phlorotanins et en pigments des espèces indigènes de Sargassaceae formant une canopée vivant dans les bassins rocheux intertidaux en Bretagne (France) : une relation avec leur distribution verticale et leur phénologie ? Mar. Drogues 2021, 19, 504. [CrossRef]
6. Guiry, MD; Guiry, GM; Sargasses, C. Agardh, 1820—AlgaeBase. Publication électronique mondiale, Université nationale d'Irlande, Galway.
7. Amador-Castro, F. ; García-Cayuela, T. ; Alper, HS; Rodriguez-Martinez, V.; Carrillo-Nieves, D. Valorisation de la biomasse pélagique de sargasses dans des applications durables : tendances et défis actuels. J. Environ. Géré. 2021, 283, 112013. [Référence croisée]
8. Daniel, SL ; Kiril, B.; Leonel, P. Production de bio-engrais à partir d'Ascophyllum nodosum et de Sargassum muticum (Phaeophyceae). J. Océanol. Limnol. 2019, 37, 918–927. [Référence croisée]
9. Ghaffar Shahriari, A. ; Mohkami, A.; Niazi, A.; Hamed Ghodoum Parizipour, M.; Habibi-Pirkoohi, M. Application d'extrait d'algues brunes (Sargassum angustifolium) pour améliorer la tolérance à la sécheresse du canola (Brassica napus L.). L'Iran. J. Biotechnol. 2021, 19, e2775. [Référence croisée]
10. Oliveira, JV ; Alves, MM; Costa, JC Optimisation de la production de biogaz à partir de Sargassum Sp. Utilisation d'un plan d'expériences pour évaluer la co-digestion avec du glycérol et de l'huile de friture usée. Bioressource. Technol. 2015, 175, 480–485. [Référence croisée]
11. Giovanna Lopresto, C. ; Paletta, R.; Filippelli, P.; Galluccio, L.; de la Rosa, C.; Amaro, E.; Jáuregui-Haza, U. ; Atilio de Frias, J. Invasion de sargasses dans les Caraïbes : Une opportunité pour les communautés côtières de produire de la bioénergie basée sur la bioraffinerie - Un aperçu. Valorisation de la biomasse des déchets 2022, 13, 2769–2793. [Référence croisée]
12. Luis Godínez-Ortega, J. ; Cuatlán-Cortés, JV ; Lopez-Bautista, JM ; van Tussenbroek, BI Une histoire naturelle des espèces flottantes de sargasses (sargasses) du Mexique. En histoire naturelle et écologie du Mexique et de l'Amérique centrale ; IntechOpen : Londres, Royaume-Uni, 2021.
13. Soleimani, S. ; Yousefzadi, M.; Nezhad, SBM ; Pojaritskaïa, Ont.; Shikov, une évaluation des fractions extraites de Polycladia Myrica : activités biologiques, effet protecteur contre les rayons UV et stabilité de la formulation de la crème basée sur celle-ci. J. Appl. Phycol. 2022, 34, 1763–1777. [Référence croisée]
14. Serrão, EA ; Alice, LA ; Brawley, SH Evolution des Fucaceae (Phaeophyceae) Infrred de NrDNA-ITS. J. Physiol. 1999, 35, 382–394. [Référence croisée]
15. Patarra, RF ; Paiva, L.; Neto, IA ; Lima, E.; Baptista, J. Valeur nutritionnelle de macroalgues sélectionnées. J. Appl. Phycol. 2011, 23, 205-208. [Référence croisée]
16. Lopes, G. ; Barbosa, M.; Vallejo, F.; Gil-Izquierdo, Á.; Andrade, PB ; Valentão, P.; Pereira, D.M. ; Ferreres, F. Profilage des phlorotanins de Fucus spp. du Littoral du Nord du Portugal : approche chimique par HPLC-DAD-ESI/MSn et UPLC-ESI-QTOF/MS. Algal Res. 2018, 29, 113–120. [Référence croisée]
17. Stansbury, J. ; Saunders, P.; Winston, D. Promotion d'une fonction thyroïdienne saine avec l'iode, le fucus, le guggul et l'iris. J. Restor. Méd. 2013, 1, 83–90. [Référence croisée]
18. Guiry, MD; Guiry, GM Fucus Linnaeus, 1753—AlgaeBase. Publication électronique mondiale, Université nationale d'Irlande, Galway.
19. Rasul, F. ; Gupta, S.; Olas, JJ; Gechev, T.; Sujeeth, N.; Mueller-Roeber, B. L'amorçage avec un extrait d'algue améliore fortement la tolérance à la sécheresse chez Arabidopsis. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 1469. [Référence croisée] [PubMed]
20. Shukla, PS ; Mantin, EG; Adil, M.; Bajpai, S.; Critchley, AT; Prithiviraj, B. Biostimulants à base d'Ascophyllum nodosum : applications durables en agriculture pour la stimulation de la croissance des plantes, la tolérance au stress et la gestion des maladies. Devant. Usine Sci. 2019, 10, 655. [Référence croisée] [PubMed]
21. Vodouhè, M.; Marois, J.; Guay, V.; Leblanc, N.; Weisnagel, SJ; Bilodeau, J.-F.; Jacques, H. Impact marginal de l'algue brune Ascophyllum nodosum et de l'extrait de Fucus vesiculosus sur la réponse métabolique et inflammatoire chez les sujets prédiabétiques en surpoids et obèses. Mar. Drogues 2022, 20, 174. [CrossRef] [PubMed]
22. Fraser, CI ; Vel, M.; Nelson, WA; Macaya, CE ; Hay, CH; McCarthy, C.; Velásquez, M.; Nelson, WA; Macaya, CE ; Hay, CH L'importance biogéographique de la flottabilité chez les macroalgues : une étude de cas du genre Durvillaea (Phaeophyceae), y compris les descriptions de deux nouvelles espèces. J. Physiol. 2007, 56, 23–36. [Référence croisée]
23. Chapon, RJ; Barrow, RA; Rochfort, S.; Jobliig, M.; Skene, C.; Lacey, E.; Gill, JH; Friedel, T.; Wadsworth, D.; Jobling, M.; et coll. Nématocides marins : tétrahydrofuranes d'une algue brune du sud de l'Australie, Notheia Anomaliz. Tétraèdre 1998, 54, 2227-2242. [Référence croisée]
24. Mueller, R. ; Wright, JT; Bolch, CJSS Démographie historique et voies de colonisation de l'algue intertidale répandue Hormosira banksii (Phaeophyceae) dans le sud-est de l'Australie. J. Physiol. 2018, 54, 56–65. [Référence croisée]
25. Clayton, MN Circonscription et relations phylogénétiques de la famille des Seirococcaceae de l'hémisphère sud (Phaeophyceae). Bot. mars 1994, 37, 213-220. [Référence croisée]
26. Kumar, LRG ; Paul, PT; Anas, KK; Tejpal, CS ; Chatterjee, N.-É.; Anupama, TK ; Mathew, S.; Ravishankar, CN Phlorotanins – Perspectives de la bioactivité et de l'extraction. J. Appl. Phycol. 2022, 34, 2173-2185. [Référence croisée] [PubMed]
27. Hermund, DB; Torsteinsen, H.; Véga, J. ; Figueroa, Floride ; Jacobsen, C. Dépistage de nouveaux cosméceutiques à partir d'algues brunes Fucus vesiculosus aux propriétés antioxydantes et photoprotectrices. Marine Drugs 2022, 20, 687. [CrossRef]
28. Lashika Blue Filter Sunscreen SPF 45 PA plus plus plus avec algues brunes—30 ml.
29. Hello Sunny Essence Sun Stick Glow SPF50 plus Pa plus plus plus plus.
30. Koivikko, R. ; Loponen, J.; Honkanen, T.; Jormalainen, V. Contenu des phlorotannins solubles, liés aux parois cellulaires et exsudés dans l'algue brune Fucus vesiculosus, avec des implications sur leurs fonctions écologiques. J. Chem. Écol. 2005, 31, 195-212. [Référence croisée]
31. Machu, L. ; Misurcova, L.; Vavra Ambrozova, J.; Orsavova, J.; Mlcek, J.; Sochor, J.; Jurikova, T. Contenu phénolique et capacité antioxydante dans les produits alimentaires à base d'algues. Molécules 2015, 20, 1118-1133. [Référence croisée]
32. Sabeena Farvin, KH ; Jacobsen, C. Composés phénoliques et activités antioxydantes d'espèces sélectionnées d'algues de la côte danoise. Chimie alimentaire. 2013, 138, 1670-1681. [Référence croisée] [PubMed]
33. Kim, SM ; Kang, SW ; Jeon, J.-S.; Jung, Y.-J.; Kim, W.-R.; Kim, CY; Euh, B.-H. Détermination des principaux phlorotannins dans les bicyclettes Eisenia à l'aide de la chromatographie d'interaction hydrophile : variations saisonnières et caractéristiques d'extraction. Chimie alimentaire. 2013, 138, 2399-2406. [Référence croisée]
34. Connan, S.; Goulard, F.; Stiger, V.; Deslandes, E.; Gall, EA Variation interspécifique et temporelle des niveaux de phlorotanin dans un assemblage d'algues brunes. Bot. mars 2004, 47, 410–416. [Référence croisée]
35. Lopes, G. ; Sousa, C.; Silva, LR; Pinto, E.; Andrade, PB ; Bernardo, J.; Mouga, T.; Valentão, P. Les extraits purifiés de phlorotannins peuvent-ils constituer une nouvelle alternative pharmacologique pour les infections microbiennes avec conditions inflammatoires associées ? PLoS ONE 2012, 7, e31145. [Référence croisée]
36. Obluchinskaya, éd. ; Pojaritskaïa, Ont.; Zakharov, DV; Flisyuk, EV ; Terninko, II; Generalova, YE; Smekhova, IE ; Shikov, AN La composition biochimique et les propriétés antioxydantes de Fucus vesiculosus de la région arctique. Mar. Drogues 2022, 20, 193. [CrossRef]
37. Pedersen, A. Études sur la teneur en phénol et l'absorption de métaux lourds dans les fucoïdes. Dans Onzième Symposium international sur les algues. Développements en hydrobiologie; Bird, CJ, Ragan, MA, Eds. ; Springer : Dordrecht, Pays-Bas, 1984 ; Volume 22, p. 498–504.
38. Connan, S.; Stengel, DB Impacts de la salinité ambiante et du cuivre sur les algues brunes : 2. Effets interactifs sur le pool phénolique et évaluation de la capacité de liaison des métaux du phlorotanin. Aquat. Toxicol. 2011, 104, 1–13. [Référence croisée] [PubMed]
39. Kamiya, M. ; Nishio, T.; Yokoyama, A.; Yatsuya, K.; Nishigaki, T.; Yoshikawa, S.; Ohki, K. Variation saisonnière du phlorotanin chez les espèces de sargasses de la côte de la mer du Japon. Phycol. Rés. 2010, 58, 53–61. [Référence croisée]
40. Ragan, MA ; Jensen, A. Études quantitatives sur les phénols d'algues brunes. II. Variation saisonnière de la teneur en polyphénols d'Ascophyllum Nodosum (L.) Le Jol. et Fucus vesiculosus (L.). J. Exp. Mar. Biol. Écol. 1978, 34, 245-258. [Référence croisée]
41. Pavie, H. ; Toth, GB Influence de la lumière et de l'azote sur la teneur en phlorotanin des algues brunes Ascophyllum nodosum et Fucus vesiculosus. Hydrobiologie 2000, 440, 299–305. [Référence croisée]
42. Pavie, H. ; Brock, E. Facteurs extrinsèques influençant la production de phlorotanin chez l'algue brune Ascophyllum nodosum. Mar. Écol. Programme. Ser. 2000, 193, 285–294. [Référence croisée]
43. Tala, F. ; Velásquez, M.; Mansilla, A.; Macaya, CE ; Thiel, M. Effets latitudinal et saisonnier sur l'acclimatation à court terme des espèces flottantes de varech du Pacifique Sud-Est. J. Exp. Mar. Biol. Écol. 2016, 483, 31–41. [Référence croisée]
44. Sardari, RRRR ; Prothmann, J.; Gregersen, O.; Turner, C.; Karlsson, EN Identification des phlorotannins dans les algues brunes, Saccharina Latissima et Ascophyllum nodosum par chromatographie liquide ultra-haute performance couplée à la spectrométrie de masse en tandem haute résolution. Molécules 2021, 26, 43. [CrossRef]
45. Tierney, MS ; Soler-Vila, A.; Rai, DK ; Croft, AK ; Brunton, PN; Smyth, TJ Profilage UPLC-MS de polymères de phlorotannin de faible poids moléculaire dans Ascophyllum nodosum, Pelvetia canaliculata et Fucus spiralis. Métabolomique 2014, 10, 524–535. [Référence croisée]
46. Catarino, MD ; Silva, AAMS ; Cruz, MT ; Mateus, N.; Silva, AAMS ; Cardoso, Phlorotannins SM de Fucus vesiculosus : Modulation de la réponse inflammatoire en bloquant la voie de signalisation NF-KB. Int. J. Mol. Sci. 2020, 21, 6897. [Référence croisée]
47. Ferreres, F. ; Lopes, G.; Gil-Izquierdo, A.; Andrade, PB ; Sousa, C.; Mouga, T.; Valentão, P. Extraits de phlorotannin de fucales caractérisés par HPLC-DAD-ESI-MSn : approches de la capacité inhibitrice de la hyaluronidase et des propriétés antioxydantes. Mar. Drugs 2012, 10, 2766–2781. [Référence croisée]
48. Catarino, MD ; Silva, AMS ; Mateus, N.; Cardoso, SM Optimisation de l'extraction des phlorotannins de Fucus vesiculosus et évaluation de leur potentiel à prévenir les troubles métaboliques. Mar. Drogues 2019, 17, 162. [CrossRef] [PubMed]
49. Li, Y. ; Fu, X.; Duan, D.; Liu, X.; Xu, JJJ; Gao, X. Extraction et identification des phlorotanins de l'algue brune, Sargasses fusiformes (Harvey) Setchell. Mar. Drogues 2017, 15, 49. [CrossRef] [PubMed]
50. Wang, T. ; Jónsdóttir, R.; Liu, H.; Gu, L.; Kristinsson, HG; Raghavan, S.; Ólafsdóttir, G. Capacités antioxydantes des phlorotanins extraits de l'algue brune Fucus vesiculosus. J. Agric. Chimie alimentaire. 2012, 60, 5874–5883. [Référence croisée] [PubMed]
51. Obluchinskaya, éd. ; Daurtseva, AV; Pojaritskaïa, Ont.; Flisyuk, EV ; Shikov, UN Solvants eutectiques profonds naturels comme alternatives pour extraire les phlorotanins des algues brunes. Pharm. Chim. J. 2019, 53, 243–247. [Référence croisée]
52. Kadam, SU ; Tiwari, BK; O'Donnell, CP; O'Donnell, CP Application de nouvelles technologies d'extraction pour les bioactifs des algues marines. J. Agric. Chimie alimentaire. 2013, 61, 4667–4675. [Référence croisée] [PubMed]
53. Michalak, I. ; Chojnacka, extraits d'algues de K. : Technologie et avances. Ing. Vie Sci. 2014, 14, 581–591. [Référence croisée]
54. Grosso, C. ; Valentão, P.; Ferrères, F.; Andrade, PB ; Mayer, AM Méthodes d'extraction alternatives et efficaces pour les composés dérivés de la mer. Mar. Drugs 2015, 13, 3182–3230. [Référence croisée]
55. Meng, W. ; Mu, T.; Soleil, H. ; Garcia-Vaquero, M. Phlorotanins : un examen des méthodes d'extraction, des caractéristiques structurelles, des bioactivités, de la biodisponibilité et des tendances futures. Algal Res. 2021, 60, 102484. [Référence croisée]
56. Lopes, G. ; Barbosa, M.; Andrade, PB ; Valentão, P. Phlorotannins de Fucales : potentiel de contrôle de l'hyperglycémie et des complications vasculaires liées au diabète. J. Appl. Phycol. 2019, 31, 3143–3152. [Référence croisée]
57. Obluchinskaya, éd. ; Pojaritskaïa, Ont.; Zakharova, LV; Daurtseva, AV; Flisyuk, EV ; Shikov, AN Efficacité des solvants eutectiques profonds naturels pour l'extraction de composés hydrophiles et lipophiles de Fucus vesiculosus. Molécules 2021, 26, 4198. [CrossRef]
58. Habeebullah, SFK ; Alagarsamy, S.; Sattari, Z.; Al-Haddad, S.; Fakhraldeen, S.; Al-Ghunaim, A.; Al-Yamani, F. Extraction assistée par enzyme de composés bioactifs à partir d'algues brunes et caractérisation. J. Appl. Phycol. 2020, 32, 615–629. [Référence croisée]
59. Ank, G. ; Antônio Perez Da Gama, B.; Pereira, RC Variation latitudinale du contenu en phlorotanin des algues brunes de l'Atlantique sud-ouest. Peer J 2019, 7, e7379. [Référence croisée] [PubMed]
60. Tabassum, M. ; Xia, A.; Murphy, JD Variation saisonnière de la composition chimique et de la production de biométhane à partir de l'algue brune Ascophyllum nodosum. Bioressource. Technol. 2016, 216, 219-226. [Référence croisée]
61. Hermund, DB; Heung, SY; Thomsen, BR; Akoh, CC; Jacobsen, C. Amélioration de la stabilité oxydative des émulsions de soins de la peau avec des extraits antioxydants d'algue brune Fucus vesiculosus. Confiture. Chimie de l'huile. Soc. 2018, 95, 1509-1520. [Référence croisée]
62. Oummat, V. ; Tiwari, BK; Jaiswal, AK ; Condon, K.; Garcia-Vaquero, M.; O'Doherty, J.; O'Donnell, C.; Rajauria, G. Optimisation de la fréquence des ultrasons, du temps d'extraction et du solvant pour la récupération des polyphénols, des phlorotannins et de l'activité antioxydante associée des algues brunes. Mar. Drogues 2020, 18, 250. [CrossRef]
63. Sumampouw, Géorgie ; Jacobsen, C.; Getachew, AT Optimisation de l'extraction d'antioxydants phénoliques de Fucus vesiculosus par extraction liquide sous pression. J. Appl. Phycol. 2021, 33, 1195-1207. [Référence croisée]
64. Yuan, Y. ; Zhang, J.; Ventilateur, J. ; Clark, J.; Shen, P.; Li, Y.; Zhang, C. Extraction assistée par micro-ondes de composés phénoliques de quatre espèces économiques de macroalgues brunes et évaluation de leurs activités antioxydantes et effets inhibiteurs sur -Amylase, -Glucosidase, Lipase pancréatique et Tyrosinase. Rés alimentaire. Int. 2018, 113, 288–297. [Référence croisée]
65. ˇCagalj, M. ; Skroza, D.; Tabanelli, G.; Özogul, F.; Šimat, V. Maximiser la capacité antioxydante de Padina pavonica en choisissant les bonnes méthodes de séchage et d'extraction. Processus 2021, 9, 587. [CrossRef]
66. Amarante, SJ; Catarino, MD; Marçal, C.; Silva, AMS ; Ferreira, R.; Cardoso, SM Extraction assistée par micro-ondes de phlorotannins de Fucus vesiculosus. Mar. Drogues 2020, 18, 559. [CrossRef]
67. Bian, C.; Gao, J.; Long, X.; Soleil, C.; Dai, L.; Xu, Z. Liquide de rétention d'humidité et procédé de préparation de celui-ci. Brevet chinois CN103520065A, 22 janvier 2014.
68. da Silva, JRM ; Alves, CMM; Pinteus, SFG; Martins, AIM ; Freitas, RPF ; Pedrosa, RFP Processus d'obtention d'un extrait enrichi en phlorotanin ayant une action anti-enzymatique pour une utilisation en dermatologie. Brevet européen EP3910064, 17 novembre 2021.
69. Prigent, A. Méthode d'obtention d'extraits d'algues marines. Brevet international WO2015071477A1, 21 mai 2015.
70. Stiger-Poivreau, V. ; Connan, S.; Gager, L.; Coiffard, L.; Couteau, C.; Decoster, S.; Gombault, LN; Cotterei, C.; Mahe, A. Extraits d'algues brunes comprenant des composés phénoliques et leurs utilisations cosmétiques. Brevet français FR3095348A1, 30 octobre 2020.
71. Tae, HL; Lee, JM; Park, SY Procédé de préparation d'extraits de Hizikia fusiforme traités aux enzymes ayant une activité d'amélioration immunitaire et une composition alimentaire et pharmaceutique fonctionnelle comprenant la même chose. Brevet coréen KR20140032101A, 14 mars 2014.
72. Liu, X. ; Yuan, W.; Sharma-shivappa, R.; Zanten, J. Van Activité antioxydante des phlorotanins des algues brunes. Int. J. Agric. Biol. Ing. 2017, 10, 184–191. [Référence croisée]
73. Abdelhamid, A. ; Jouini, M.; Bel Haj Amor, H. ; Mzoughi, Z.; Dridi, M.; Ben Saïd, R. ; Bouraoui, A. Analyse phytochimique et évaluation du potentiel antioxydant, anti-inflammatoire et antinociceptif des fractions riches en phlorotanin de trois algues brunes méditerranéennes. Mar. Biotechnol. 2018, 20, 60–74. [Référence croisée] [PubMed]
74. Lamuela-Raventós, Méthode RM Folin-Ciocalteu pour la mesure de la teneur phénolique totale et de la capacité antioxydante. Dans Mesure de l'activité et de la capacité antioxydantes : tendances et applications récentes ; John Wiley & Sons, Ltd. : Hoboken, NJ, États-Unis, 2017 ; p. 107–115. ISBN 9781119135388.
75. Cotas, J. ; Leandro, A.; Monteiro, P.; Pacheco, D.; Figueirinha, A.; Gonc ˛alves, AMM ; da Silva, GJ; Pereira, L. Phénoliques aux algues : de l'extraction aux applications. Mar. Drogues 2020, 18, 384. [CrossRef] [PubMed]
76. Everette, JD ; Bryant, QM; Vert, AM ; Abbey, YA ; Wangila, GW; Walker, RB Étude approfondie de la réactivité de diverses classes de composés vis-à-vis du réactif de Folin-Ciocalteu. J. Agric. Chimie alimentaire. 2010, 58, 8139–8144. [Référence croisée] [PubMed]
77. Stern, JL; Hagerman, AE; Steinberg, PD ; Hiver, FC ; Estes, JA Un nouveau test pour quantifier les phlorotanins des algues brunes et les comparaisons avec les méthodes précédentes. J. Chem. Écol. 1996, 22, 1273-1293. [Référence croisée]
78. Steevensz, AJ ; MacKinnon, SL; Hankinson, R.; Craft, C.; Connan, S.; Stengel, DB; Melanson, JE Profilage des phlorotannins dans les macroalgues brunes par chromatographie liquide-spectrométrie de masse à haute résolution. Phytochem. Anal. 2012, 23, 547-553. [Référence croisée]
79. Agregán, R. ; Munekata, PSE ; Franco, D.; Dominguez, R.; Carballo, J.; Lorenzo, JM Composés phénoliques de trois espèces d'algues brunes à l'aide de LC-DAD–ESI-MS/MS. Rés alimentaire. Int. 2017, 99, 979–985. [Référence croisée]
80. Glombitza, KW ; Schmidt, A. Trihydroxyphloréthols de l'algue brune Carpophyllum angustifolium. Phytochimie 1999, 51, 1095–1100. [Référence croisée]
81. Sailler, B. ; Glombitza, KW Phloréthols et Fucophloréthols de l'algue brune Cystophora retroflexa. Phytochimie 1999, 50, 869–881. [Référence croisée]
82. Glombitza, KW ; Keusgen, M.; Hauperich, S. Fucophlorethols des algues brunes Sargassum spinuligerum et Cystophora torulosa. Phytochimie 1997, 46, 1417–1422. [Référence croisée]
83. Glombitza, KW ; Keusgen, M. Fuhalols et Deshydroxyfuhalols de l'algue brune Sargassum spinuligerum. Phytochimie 1995, 38, 987–995. [Référence croisée]
84. Glombitza, KW ; Schmidt, A. Phlorotanins non halogénés et halogénés de l'algue brune Carpophyllum angustifolium. J. Nat. Prod. 1999, 62, 1238-1240. [Référence croisée]
85. Koch, M.; Gregson, RP Les phloréthols bromés et les phlorotanins non halogénés de l'algue brune Cystophora sont congestionnés. Phytochimie 1984, 23, 2633–2637. [Référence croisée]
86. Sailler, B.; Glombitza, KW Phloréthols et Fucophloréthols halogénés de l'algue brune Cystophora retroflexa. Nat. Toxines 1999, 7, 57–62. [Référence croisée]
87. Koivikko, R. ; Loponen, J.; Pihlaja, K.; Jormalainen, V. Analyse chromatographique liquide à haute performance des phlorotannins de l'algue brune Fucus vesiculosus. Phytochem. Anal. 2007, 18, 326–332. [Référence croisée] [PubMed]
88. Corona, G. ; Ji, Y.; Anegboonlap, P.; Hotchkiss, S.; Gill, C.; Yaqoob, P.; Spencer, JPE ; Rowland, I. Modifications gastro-intestinales et biodisponibilité des phlorotanins d'algues brunes et effets sur les marqueurs inflammatoires. Br. J. Nutr. 2016, 115, 1240-1253. [Référence croisée] [PubMed]
89. Sentkowska, A.; Pyrzynska, K. Chromatographie HILIC : technique puissante dans l'analyse des polyphénols. Dans Polyphénols dans les plantes ; Presse académique : Cambridge, MA, États-Unis, 2019 ; p. 341–351. [Référence croisée]
90. Marrubini, G. ; Appelblad, P.; Maietta, M.; Papetti, A. Chromatographie d'interaction hydrophile dans l'analyse des matrices alimentaires : une revue mise à jour. Chimie alimentaire. 2018, 257, 53–66. [Référence croisée]
91. Pyrzynska, K. ; Sentkowska, A. Développements récents dans la séparation HPLC des composés alimentaires phénoliques. Crit. Rév. Anal. Chim. 2015, 45, 41–51. [Référence croisée]
92. Montero, L.; Sánchez-Camargo, AP ; García-Cañas, V.; Tanniou, A.; Stiger-Pouvreau, V.; Russo, M.; Rastrelli, L.; Cifuentes, A.; Herrero, M.; Ibáñez, E. Activité anti-proliférative et caractérisation chimique par chromatographie liquide bidimensionnelle complète couplée à la spectrométrie de masse des phlorotanins de la macroalgue brune Sargassum muticum collectée sur les côtes nord-atlantiques. J. Chromatogr. 2016, 1428, 115-125. [Référence croisée]
93. Swartz, M. Détecteurs HPLC : Un bref examen. J. Liq. Chromatogr. Rel. Technol. 2010, 33, 1130–1150. [Référence croisée]
94. Vissers, AM ; Caligiani, A.; Sforza, S.; Vincken, JP; Gruppen, H. Phlorotanin Composition de Laminaria digitata. Phytochem. Anal. 2017, 28, 487–495. [Référence croisée]
95. Olate-Gallegos, C. ; Barriga, A.; Vergara, C.; Fredes, C.; García, P.; Gimenez, B.; Robert, P. Identification des polyphénols à partir d'extraits d'algues brunes chiliennes par LC-DAD-ESI-MS/MS. J. Aquat. Alimentaire Prod. Technol. 2019, 28, 375–391. [Référence croisée]
96. Catarino, MD ; Fernandes, I.; Oliveira, H.; Carrascal, M.; Ferreira, R.; Silva, AMS ; Cruz, MT ; Mateus, N.; Cardoso, SM Activité antitumorale des phlorotannins dérivés de Fucus vesiculosus par l'activation des signaux apoptotiques dans les lignées cellulaires de tumeurs gastriques et colorectales. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 7604. [Référence croisée] [PubMed]
97. Audibert, L. ; Fauchon, M.; Blanc, N.; Hauchard, D.; Ar Gall, E.; Gall, composés phénoliques EA dans l'algue brune Ascophyllum nodosum : activités de distribution et de piégeage des radicaux. Phytochem. Anal. 2010, 21, 399-405. [Référence croisée]
98. Heffernan, N.; Brunton, PN; FitzGerald, RJ ; Smyth, TJ Profilage du poids moléculaire et de l'abondance structurelle des isomères des phlorotannins dérivés de macroalgues. Mar. Drugs 2015, 13, 509–528. [Référence croisée]
99. Kirke, DA; Smyth, TJ; Rai, DK ; Kenny, O.; Stengel, DB La stabilité chimique et antioxydante des phlorotannins isolés de faible poids moléculaire. Chimie alimentaire. 2017, 221, 1104-1112. [Référence croisée] [PubMed]
100. Zhang, R.; Yuen, AKL ; Magnusson, M.; Wright, JT; de Nys, R.; Maîtrise, AF ; Maschmeyer, T. Une évaluation comparative de l'activité et de la structure des phlorotanins de l'algue brune Carpophyllum flexuosum. Algal Res. 2018, 29, 130–141. [Référence croisée]
101. Allwood, JW ; Evans, H.; Austin, C.; McDougall, GJ Extraction, enrichissement et caractérisation basée sur LC-MSn des phlorotannins et des composés phénoliques apparentés de l'algue brune, Ascophyllum nodosum. Mar. Drogues 2020, 18, 448. [CrossRef]
102. Koivikko, R. ; Eränen, JK; Loponen, J.; Jormalainen, V. Variation des phlorotannins parmi trois populations de Fucus vesiculosus révélées par HPLC et quantification colorimétrique. J. Chem. Écol. 2008, 34, 57–64. [Référence croisée]
103. Kirke, DA; Rai, DK ; Smyth, TJ; Stengel, DB Une évaluation de la variation temporelle dans les profils de phlorotanin de faible poids moléculaire dans quatre macroalgues brunes intertidales. Algal Res. 2019, 41, 101550. [Référence croisée]
104. Parys, S.; Kehraus, S.; Krick, A.; Glombitza, KW; Carmeli, S.; Klimo, K.; Gerhauser, C.; König, GM Potentiel chimiopréventif in vitro des fucophloréthols de l'algue brune Fucus vesiculosus L. par activité antioxydante et inhibition de certaines enzymes du cytochrome P450. Phytochimie 2010, 71, 221–229. [Référence croisée]
105. Hermund, DB; Plaza, M. ; Turner, C.; Jónsdóttir, R.; Kristinsson, HG; Jacobsen, C.; Nielsen, KF Capacité antioxydante dépendante de la structure des phlorotannins de Fucus vesiculosus islandais par UHPLC-DAD-ECD-QTOFMS. Chimie alimentaire. 2018, 240, 904–909. [Référence croisée] [PubMed]
106. Ovtchinnikov, DV ; Bogolitsyn, KG; Druzhinina, AS ; Kaplitsin, Pennsylvanie ; Parchina, AE; Pikovskoï, II; Khoroshev, OY; Turova, Pennsylvanie ; Stavrianidi, AN ; Shpigun, OA Étude des composants polyphénoliques dans des extraits d'algues brunes arctiques de type Fucus vesiculosus par chromatographie liquide et spectrométrie de masse. J.Anal. Chim. 2020, 75, 633–639. [Référence croisée]
107. Kellogg, J.; Grâce, MH ; Lila, MA Les phlorotannins des algues d'Alaska inhibent l'activité des enzymes carbolytiques. Mar. Drugs 2014, 12, 5277–5294. [Référence croisée] [PubMed]
108. Kellogg, J.; Esposito, D.; Grâce, MH ; Komarnytsky, S.; Lila, MA Les algues d'Alaska réduisent l'inflammation dans les macrophages RAW 264.7 et diminuent l'accumulation de lipides dans les adipocytes 3T3-L1. J. Fonction. Aliments 2015, 15, 396–407. [Référence croisée]
109. Baldrick, France ; McFadden, K.; Ibars, M.; Sung, C.; Moffatt, T.; Megarry, K.; Thomas, K.; Mitchell, P.; Wallace, JMW; Pourshahidi, LK; et coll. Impact d'un extrait riche en (poly)phénols de l'algue brune Ascophyllum nodosum sur les dommages à l'ADN et l'activité antioxydante dans une population en surpoids ou obèse : un essai contrôlé randomisé. Suis. J.Clin. Nutr. 2018, 108, 688–700. [Référence croisée]
110. Vázquez-Rodríguez, B. ; Gutiérrez-Uribe, JA ; Antunes-Ricardo, M.; Santos-Zea, L.; Cruz-Suárez, LE Extraction assistée par ultrasons des phlorotannins et des polysaccharides de Silvetia compressa (Phaeophyceae). J. Appl. Phycol. 2020, 32, 1441–1453. [Référence croisée]
111. Keusgen, M. ; Glombitza, KW Phlorethols, Fuhalols et leurs dérivés de l'algue brune Sargassum spinuligerum. Phytochimie 1995, 38, 975–985. [Référence croisée]
112. Keusgen, M. ; Glombitza, KW Pseudofuhalols de l'algue brune Sargassum spinuligerum. Phytochimie 1997, 46, 1403–1415. [Référence croisée]
113. Vijayan, R. ; Chitra, L.; Penislusshiyan, S.; Palvannan, T. Exploration de la fraction bioactive de Sargassum wightii : élucidation in vitro de l'inhibition de l'enzyme de conversion de l'angiotensine-i et du potentiel antioxydant. Int. J. Food Prop. 2018, 21, 674–684. [Référence croisée]
114. Kord, A.; Foudil-Chérif, Y. ; Amiali, M.; Boumechhour, A.; Benfares, R. Composition des phlorotannins, capacité de piégeage des radicaux et pouvoir réducteur des composés phénoliques de l'algue brune Cystoseira sauvageauana. J. Aquat. Alimentaire Prod. Technol. 2021, 30, 426–438. [Référence croisée]
115. Gheda, S. ; Naby, MA; Mohamed, T.; Pereira, L.; Khamis, A. Activité antidiabétique et antioxydante des phlorotannins extraits de l'algue brune Cystoseira compressa chez des rats diabétiques induits par la streptozotocine. Environ. Sci. Pollution. Rés. 2021, 28, 22886–22901. [Référence croisée] [PubMed]
116. Trifan, A. ; Vasincu, A.; Luca, SV; Néophytou, C.; Wolfram, E.; Opitz, SEW; Sava, D.; Bucur, L.; Cioroiu, BI; Miron, A.; et coll. Découvrir le potentiel des algues de la côte de la mer Noire en Roumanie en tant que sources de composés bioactifs. Partie I : Cystoseira barbata (Stackhouse) C. Agardh. Chimie alimentaire. Toxicol. 2019, 134, 110820. [Référence croisée] [PubMed]
117. Gonçalves-Fernández, C. ; Sineiro, J.; Moreira, R.; Gualillo, O. Extraction et caractérisation des fractions enrichies en phlorotannin de l'algue atlantique Bifurcaria bifurcata et évaluation de leur activité cytotoxique dans la lignée cellulaire murine. J. Appl. Phycol. 2019, 31, 2573-2583. [Référence croisée]
118. Catarino, MD ; Alves-Silva, JM; Falcão, SI; Vilas-Boas, M.; Jordão, M.; Cardoso, SM La chromatographie comme outil d'identification des composés bioactifs dans les produits d'abeilles d'origine botanique. en chimie, biologie et applications potentielles des produits dérivés des plantes d'abeilles ; Cardoso, SM, Silva, AMS, Eds. ; Bentham Science Publishers : Sharjah, Émirats arabes unis, 2016 ; p. 89–149. ISBN 9781681082370.
119. Ford, L. ; Théodoridou, K.; Sheldrake, GN ; Walsh, PJ Un examen critique des méthodes analytiques utilisées pour la caractérisation chimique et la quantification des composés de phlorotanin dans les algues brunes. Phytochem. Anal. 2019, 30, 587–599. [Référence croisée] [PubMed]
120. Isaza Martinez, JH ; Torres Castañeda, HG Préparation et analyse chromatographique des phlorotanins. J. Chromatogr. Sci. 2013, 51, 825–838. [Référence croisée]
121. Rajauria, G. Optimisation et validation de la méthode HPLC en phase inverse pour l'évaluation qualitative et quantitative des polyphénols dans les algues. J.Pharm. Biomédical. Anal. 2018, 148, 230-237. [Référence croisée]
122. Kumar, Y. ; Singhal, S.; Tarafdar, A.; Pharande, A.; Ganesan, M.; Badgujar, PC Extraction assistée par ultrasons de macroalgues comestibles sélectionnées : effet sur l'activité antioxydante et évaluation quantitative des polyphénols par chromatographie liquide avec spectrométrie de masse en tandem (LC-MS/MS). Algal Res. 2020, 52, 102114. [Référence croisée]
123. Catarino, DM ; Silva, MA; Cardoso, MS Fucaceae : une source de phlorotanins bioactifs. Int. J. Mol. Sci. 2017, 18, 1327. [Référence croisée]
124. Pantidos, N. ; Boath, A.; Lund, V.; Conner, S.; McDougall, GJ Extraits phénoliques riches d'algues comestibles, Ascophyllum nodosum, Inhibit -Amylase et -Glucosidase: effets anti-hyperglycémiques potentiels. J. Fonction. Aliments 2014, 10, 201–209. [Référence croisée]
125. Karthik, R.; Manigandan, V.; Sheeba, R.; Saravanan, R.; Rajesh, PR Caractérisation structurale et propriétés biomédicales comparatives du phloroglucinol des algues brunes indiennes. J. Appl. Phycol. 2016, 28, 3561-3573. [Référence croisée]
126. Parys, S.; Kehraus, S.; Pete, R. ; Küpper, FC ; Glombitza, K.-W.; König, GM Variation saisonnière des polyphénols chez Ascophyllum nodosum (Phaeophyceae). EUR. J. Physiol. 2009, 44, 331–338. [Référence croisée]
127. Shrestha, S.; Zhang, W.; Smid, SD Phlorotanins : un examen de la biosynthèse, de la chimie et de la bioactivité. Bioscience alimentaire. 2021, 39, 100832. [Référence croisée]
128. Erpel, F. ; Mateos, R.; Pérez-Jiménez, J.; Pérez-Correa, JR Phlorotannins : de l'isolement et de la caractérisation structurale à l'évaluation de leur potentiel antidiabétique et anticancéreux. Rés alimentaire. Int. 2020, 137, 109589. [Référence croisée] [PubMed]
129. Jégou, C.; Kervarec, N.; Cérantola, S.; Bihannic, I.; Stiger-Pouvreau, V. Utilisation de la RMN pour quantifier les phlorotannins : le cas de Cystoseira tamariscifolia, une macroalgue brune productrice de phloroglucinol en Bretagne (France). Talante 2015, 135, 1–6. [Référence croisée]
130. Jégou, C.; Culioli, G.; Kervarec, N.; Simon, G.; Stiger-Pouvreau, V. LC/ESI-MSn et 1H HR-MAS NMR Analytical Methods as Useful Taxonomical Tools within the Genus Cystoseira C. Agardh (Fucales; Phaeophyceae). Talante 2010, 83, 613–622. [Référence croisée]
131. Ford, L. ; Stratakos, AC ; Théodoridou, K.; Dick, JTA ; Sheldrake, GN ; Linton, M.; Corcionivoschi, N.; Walsh, PJ Polyphénols d'algues brunes en tant qu'agent antimicrobien potentiel dans les aliments pour animaux. ACS Oméga 2020, 5, 9093–9103. [Référence croisée]
132. Glombitza, KW ; Rosener, HU ; Müller, D. Bifuhalol Und Diphlorethol Aus Cystoseira tamariscifolia. Phytochimie 1975, 14, 1115–1116. [Référence croisée]
133. Jacobsen, C.; Sørensen, A.-DM ; Holdt, SL; Akoh, CC; Hermund, DB Caractérisation et applications de nouveaux antioxydants à partir d'algues. Annu. Rev Food Sci. Technol. 2019, 10, 541–568. [Référence croisée]
134. Mateos, R. ; Pérez-Correa, JR ; Domínguez, H. Propriétés bioactives des composés phénoliques marins. Mar. Drogues 2020, 18, 501. [CrossRef]
135. Glombitza, KW ; Hauperich, S.; Keusgen, M. Phlorotannins des algues brunes Cystophora torulosa et Sargassum spinuligerum. Nat. Toxines 1997, 5, 58–63. [Référence croisée]
136. Koch, M.; Glombitza, KW; Rösener, HU Éthers polyhydroxyphényliques de Bifurcaria bifurcata. Phytochimie 1981, 20, 1373–1379. [Référence croisée]
137. Cérantola, S. ; Breton, F. ; Gall, EA ; Deslandes, E. Co-occurrence et activités antioxydantes des classes de fucol et de fucophloréthol de phénols polymères dans Fucus spiralis. Bot. mars 2006, 49, 347–351. [Référence croisée]
138. McInnes, AG ; Ragan, MA; Smith, DG ; Walter, JA Les polyphloroglucinols de haut poids moléculaire de l'algue brune marine Fucus vesiculosus L. Spectroscopie de résonance magnétique nucléaire 1H et 13C. Peut. J. Chem. 1985, 63, 304-313. [Référence croisée]
139. le Lann, K. ; Surget, G.; Couteau, C.; Coiffard, L.; Cérantola, S.; Gaillard, F.; Larnicol, M.; Zubia, M.; Guérard, F.; Poupart, N.; et coll. Capacités solaires, antioxydantes et bactéricides des phlorotannins de la macroalgue brune Halidrys siliquosa. J. Appl. Phycol. 2016, 28, 3547–3559. [Référence croisée]






