PARTIE 2 Révéler l’impact de l’environnement sur la salsa Cistanche : de la régionalisation écologique mondiale aux caractéristiques de la communauté microbienne du sol

Mar 03, 2022

CLIQUEZ ICI POUR LA PARTIE 1

Pour de plus amples renseignements, veuillez communiquer avec :Joanna.jia@wecistanche.com

cistanche raw materials

L’extrait de cistanche a de nombreux avantages pour la santé

4. DISCUSSION

Les zones de croissance les plus appropriées deC. salsa(Figure 2) sont principalement répartis dans les pays le long de l’initiative « la Ceinture et la Route », tels que ceux d’Asie centrale et d’Asie occidentale, de la côte méditerranéenne, des pays d’Afrique du Nord, dont l’Égypte et la Libye, ainsi que de la Chine, de l’Arabie saoudite et du Pakistan.31 La plupart de ces pays se trouvent dans des zones climatiques désertiques et souffrent d’une grave désertification des terres.C. salsaest une plante parasite non photosynthétique qui pousse dans les déserts, les ceintures de steppes désertiques et les sites soumis à un fort stress salin-alcalin à des altitudes de 700−2650 m.32C. salsaparasite les racines de ses hôtes, tels que palladium, Ceratoides et Suaedas, qui jouent un rôle important dans l’amélioration de l’environnement écologique des régions arides.33C. salsaconvient à la culture dans des conditions d’ensoleillement suffisant, de faibles précipitations, de sécheresse précoce, de température cumulative élevée et de grandes différences de température entre le jour et la nuit.34C. salsaet son hôte peut pousser sur des terres désertiques stériles et arides, et ils ont pour fonctions de maintenir l’eau et le sol, de prévenir le vent et le sable et d’améliorer l’environnement désertique. Par conséquent, promouvoir la culture deC. salsaest important pour améliorer la désertification des terres dans ces régions. Pendant ce temps, l’excellente valeur comestible et médicinale deC. salsapeut fournir des ressources pour le développement économique local. Les fonctions écologiques et médicinales deC. salsaconférer une signification sociale à la promotion de la culture artificielle, fournissant ainsi une base théorique pour la lutte contre la désertification des pays de la Ceinture et la Route, la conservation des ressources sauvages deC. salsa, et le développement durable de sa valeur économique.

Le microbiome du sol de la rhizosphère joue un rôle important dans la vie végétale en favorisant la survie des plantes dans des conditions défavorables.35 Des études ont rapporté qu’il existe des rhizobiums de croissance des plantes (PGPR) dans le genre Arthrobacter, qui peuvent dissoudre le phosphate et hydrolyser la caséine, prouvant son potentiel pour stimuler la maturation des plantes.36 C’est un rhizobium fixateur d’azote qui peut former une symbiose avec les plantes.37 Arthrobacter et plusieurs souches de Streptomyces dégradent les pesticides agricoles dans une synergie 38 La distribution généralisée de Sphingomonas dans l’environnement est due à sa capacité à utiliser une variété de composés organiques et à croître et survivre dans des conditions pauvres en nutriments.39 Certaines bactéries du genre Sphingomonas est un PGPR qui peut favoriser la croissance du riz et de la tomate et peut également être utilisé comme ressource biologique écologique pour nettoyer les endroits pollués et promouvoir la croissance des plantes confrontées à l’environnement perturbations.40,41 Le bacille peut survivre dans des conditions extrêmes et peut se développer sous des concentrations de pH, de température et de sel.42 Certaines bactéries de Bacillus sont un PGPR qui motive la croissance des plantes et inhibe les agents pathogènes des plantes transmis par le sol en produisant des métabolites secondaires.43 Rubrobacter favorise la croissance des cultures sur les terres touchées par la salinité.35 Certaines bactéries de Streptomyces agissent comme un PGPR et un suppresseur de maladies végétales via divers mécanismes, tels que l’augmentation de l’apport en nutriments, y compris le phosphore, le soufre, le fer et le cuivre, et la production d’AIA, de cytokinines et de sidérophores.44 Les plantes comptent sur l’interaction bénéfique entre les racines et les micro-organismes pour obtenir des nutriments, favoriser la croissance et résister au stress externe.45 En résumé, les bactéries dans la plupart des genres centraux dans le sol aride et stérile deC. salsaont été signalés pour produire des nutriments, favoriser la croissance des plantes et aider les plantes à résister aux maladies. Les microbiomes de base ci-dessus peuvent être utilisés comme engrais clé pour la culture artificielle deC. salsa. Nous analyserons plus en détail la culture de ces microbiomes de base dans les travaux suivants. De plus, étant donné que les résultats d’annotation du séquençage à haut débit restent principalement au niveau du genre, l’étape suivante consiste à localiser plus précisément le niveau de l’espèce pour la recherche.

Les précipitations sont un facteur écologique important qui affecte leC. salsadistribution. Les résultats des essais de Jackknife dans le modèle MaxEnt (tableau 2) ont permis de vérifier que les précipitations du quart le plus sec (bio17) ont le taux de contribution le plus élevé à la prévision de la répartition des espèces deC. salsa. Les précipitations affectent les plantes à feuilles caduques semi-arides et arides dans la région du Kalahari en Afrique du Sud.46 Les précipitations du trimestre le plus chaud affectent le plus fortement les distributions de P. bauxite et de P. vanity.47 Une étude sur le changement climatique en Afrique de l’Ouest a révélé que les changements dans la distribution des plantes sont liés à la réduction des précipitations.48 Pour la composition de la communauté microbienne du sol de C. salsa avec différents écotypes, le mode d’influence des facteurs environnementaux est différent. Selon les résultats de l’AJR et de l’analyse de corrélation, les principaux facteurs bioclimatiques affectant la composition microbienne du sol sont l’altitude, les précipitations du quart le plus chaud (bio18), la plage diurne moyenne (bio2) et la température moyenne du trimestre le plus chaud (bio10). Des altitudes différentes peuvent entraîner un déplacement de la matière organique du sol, modifiant ainsi la composition des communautés microbiennes du sol.49 Dans les environnements arides, les changements saisonniers des précipitations affectent de manière significative la biomasse microbienne du sol et la composition de la communauté.50 Des études ont également rapporté que la quantité de précipitations et le calendrier saisonnier déterminent la durée et la distribution de l’eau disponible pour l’activité végétale et microbienne dans la steppe désertique froide.51 Études sur les schémas spatio-temporels de la diversité bactérienne du sol dans les environnements arides a montré que les précipitations sont un facteur important dans la détermination des changements dans l’activité bactérienne.52 L’étude a révélé que les précipitations du quart le plus chaud sont essentielles à la diversité et à la composition communautaire de Phytophthora dans différentes régions écologiques de l’Australie, en particulier P. multivora et P. cinnamomi.53 La température du sol affecte la décomposition des micro-organismes et donc la composition des communautés microbiennes du sol, 54 et la température reflète également les changements saisonniers des communautés bactériennes.55En résumé, les précipitations saisonnières, les changements de température et l’altitude sont les facteurs écologiques qui doivent être pris en compte pour la culture artificielle de C. salsa.

cistanche deserticola benefits

cistancheavantages de la deserticola

En conclusion, cette étude est la première à explorer la relation entre l’environnement etC. salsaà partir des dimensions macro et micro. Les conclusions suivantes ont été tirées. (1) Les régions qui conviennent àC. salsala croissance est principalement concentrée dans les pays de l’initiative « la Ceinture et la Route », tels que la Chine, l’Égypte et la Libye. (2) Les principaux genres microbiens (Arthrobacter, Sphingomonas et Bacillus) des trois écotypes deC. salsasont presque PGPR qui peuvent produire leurs propres nutriments. (3) Les précipitations sont un facteur écologique important qui influe sur la distribution et la composition de la communauté microbienne du sol.C. salsa.Notre étude fournit des informations sur la relation réglementaire entre la distribution appropriée de C. salsa, les communautés microbiennes du sol et l’environnement. De plus, nous fournissons une base théorique pour la culture artificielle deC. salsa.

INFORMATIONS SUR L’AUTEUR

Auteur correspondant

Lin-Fang Huang − Laboratoire de recherche clé sur la protection des ressources en médecine traditionnelle chinoise, l’administration de la médecine traditionnelle chinoise, l’administration nationale de la médecine traditionnelle chinoise, l’Institut de développement des plantes médicinales, l’Académie chinoise des sciences médicales et Pékin

Cistanche deserticola have many effects, click here to know more

Cistanche deserticola a de nombreux effets

Auteurs

Xiao Sun − Laboratoire de recherche clé de la protection des ressources en médecine traditionnelle chinoise, Administration de la médecine traditionnelle chinoise, Administration nationale de la médecine traditionnelle chinoise, Institut de développement des plantes médicinales, Académie chinoise des sciences médicales et Collège médical de l’Union de Pékin, Beijing 100193, Chine; orcid.org/0000-0001-9169- 3356

Jin Pei − Université de médecine traditionnelle chinoise de Chengdu, Chengdu, 611137 du Sichuan, Chine

Yu-lin Lin − Laboratoire de recherche clé de la protection des ressources en médecine traditionnelle chinoise, Administration de la médecine traditionnelle chinoise, Administration nationale de la médecine traditionnelle chinoise, Institut de développement des plantes médicinales, Académie chinoise des sciences médicales et Collège médical de l’Union de Pékin, Beijing 100193, Chine

Bao-li Li − Laboratoire de recherche clé de la protection des ressources en médecine traditionnelle chinoise, Administration de la médecine traditionnelle chinoise, Administration nationale de la médecine traditionnelle chinoise, Institut de développement des plantes médicinales, Académie chinoise des sciences médicales et Collège médical de l’Union de Pékin, Beijing 100193, Chine

Li Zhang − Collège des sciences, Université d’agriculture du Sichuan, Ya’an, 625014 du Sichuan, Chine

Bashir Ahmad − Centre de biotechnologie et de microbiologie, Université de Peshawar, Peshawar 25000, Pakistan

Les coordonnées complètes sont disponibles à l’adresse suivante : https://pubs.acs.org/10.1021/acs.jafc.0c01568

Anti-radiation

Cistancheextrait a anti-rayonnementSantéAvantages

Financement

Ce travail a été soutenu par la National Natural Science Foundation of China (81473315 et U1812403-1), le National Science & Technology Fundamental Resources Investigation Program of China (2018FY100701), le Sichuan Province Science and Technology Plan Project (2018JZ0028), open Research Fund of Chengdu University of Traditional Chinese Medicine Key Laboratory of Systematic Research of Distinctive Chinese Medicine Resources in Southwest China (003109034001), et beijing Natural Scientific Foundation (7202135), qui sont reconnaissants.

Notes

Les auteurs ne déclarent aucun intérêt financier concurrent.

REMERCIEMENTS

Nous exprimons nos grands remerciements à Xiangxiao Meng de l’Institut de la Materia Medica chinoise, Académie chinoise des sciences médicales chinoises, pour les directives d’utilisation des logiciels MaxEnt et ArcGIS.


RÉFÉRENCES

(1) Trampetti, F.; Pereira, C.; Rodrigues, M. J.; Celaj, O.; D’Abrosca, B.; Zengin, G.; Mollica, A.; Stefanucci, A.; Custod́io, L. Explorer l’halophyte Cistanche phelypaea (L.) Cout comme source de produits bénéfiques pour la santé: propriétés antioxydantes et inhibitrices enzymatiques in vitro, profil métabolomique et études computationnelles. J. Pharm. Biomed. Anal. 2019, 165, 119−128.

(2) Wiedermann, M. M.; Nordin, A.; Gunnarsson, États-Unis; Nilsson, M. B.; Ericson, L. Le changement global déplace la végétation et les interactions plantes-parasites dans une tourbière boréale. Ecology 2007, 88 (2), 454−464.

(3) Sakaguchi, S.; Horie, K.; Ishikawa, N.; Nishio, S.; Worth, J. R.; Fukushima, K.; Yamasaki, M.; Ito, M. Maintien des écotypes de sol de Solidago virgaurea en parapatry étroite via un temps de floraison divergent et une sélection contre les immigrants. J. Ecol. 2019, 107 (1), 418−435.

(4) Dim, X.; Li, L.; Pei, J.; Liu, C.; Huang, L.-F. Le profilage du métabolome et du transcriptome révèle une variation de la qualité et une régulation sous-jacente de trois écotypes pour la deserticole de Cistanche. Plant Mol. Biol. 2020, 102 (3), 253−269.

(5) Li, L.; Josef, B. A.; Liu, B.; Zheng, S.; Huang, L.; Chen, S. Évaluation tridimensionnelle de la diversité ecotypique de la médecine traditionnelle chinoise: une étude de cas d’Artemisia annua L. Front. Plant Sci. 2017, 8, 1225.

(6) Li, L.; Zheng, S.; Brinckmann, J. A.; Fu, J.; Zeng, R.; Huang, L.; Chen, S. Diversité chimique et génétique d’Astragalus mongholicus cultivé dans différentes régions écoclimatiques. PLoS One 2017, 12 (9), e0184791.

(7) Förster, N.; Ulrichs, C.; Schreiner, M.; Arndt, N.; Schmidt, R.;

Mewis, I. Variabilité de l’écotype dans la croissance et profil des métabolites secondaires chez Moringa oleifera: Impact de la disponibilité du soufre et de l’eau. J. Agric. Food Chem. 2015, 63 (11), 2852−2861.

(8) Presse, M. C.; Phoenix, G. K. Impacts des plantes parasites sur les communautés naturelles. Nouveau Phytol. 2005, 166 (3), 737−751.

(9) Bardgett, R. D.; Smith, R. S.; Shiel, R. S.; Peacock, S.; Simkin, J. M.; Quirk, H.; Hobbs, P. J. Les plantes parasites régulent indirectement les propriétés souterraines dans les écosystèmes de prairies. Nature 2006, 439 (7079), 969− 972.

(10) Du, Z.; Wu, J.; Meng, X.; Li, J.; Huang, L. Prédire la distribution potentielle mondiale de quatre espèces de Panax menacées dans les régions de latitude moyenne et basse de la Chine par le système d’information géographique pour les plantes médicinales mondiales (GMPGIS). Molécules 2017, 22 (10), 1630.

(11) Wang, Y.; Zhang, L.; Du, Z.; Pei, J.; Huang, L. Diversité chimique et prédiction des zones de culture potentielles des herbes Cistanche. Sci. Rep. 2019, 9 (1), 1−13.

(12) Moat, J.; Williams, J.; Baena, S.; Wilkinson, T.; Gole, T. W.; Challa, Z. K.; Demissew, S.; Davis, A. P. Potentiel de résilience du secteur du café éthiopien sous le changement climatique. Nat. Plants 2017, 3 (7), 17081.

(13) Meng, X.; Huang, L.; Dong, L.; Li, X.; Wei, F.; Chen, Z.; Wu, J.; Dim, C.; Yu, Y.; Chen, S. Analyse de l’écologie globale de Panax notoginseng en pertinence et qualité. Acta Pharm. Sin. 2016, 51 (9), 1483−1493.

(14) Bradie, J.; Leung, B. Synthèse quantitative de l’importance des variables utilisées dans les modèles de distribution des espèces MaxEnt. Journal of Biogeography 2017, 44 (6), 1344−1361.

(15) Ren, G.; Mateo, R. G.; Liu, J.; Suchan, T.; Alvarez, N.; Guisan, A.; Conti, E.; Salamin, N. Conséquences génétiques des oscillations climatiques quaternaires dans l’Himalaya: Primula tibetica comme étude de cas basée sur le séquençage de l’ADN associé au site de restriction. Nouveau Phytol. 2017, 213 (3), 1500−1512.

(16) Ju, F.; Zhang, T. 16S RRNA gene high-throughput sequencing data mining of microbial diversity and interactions. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2015, 99 (10), 4119−4129.

(17) Cui, J.-L.; Vijayakumar, V.; Zhang, G. Partitionnement des assemblages d’endophytes fongiques chez la plante parasite des racines Cynomorium songaricum et son hôte Nitraria tangutorum. Devant. Microbiol. 2018, 9, 666.

(18) Fick, S. E.; Hijmans, R. J. WorldClim 2: new 1-km spatial resolution climate surfaces for global land areas. Revue internationale de climatologie 2017, 37 (12), 4302−4315.

(19) Dormann, C. F.; Elith, J.; Bacher, S.; Buchmann, C.; Carl, G.; Carré,́G.; Marqueź, J. R. G.; Gruber, B.; Lafourcade, B.; Leitaõ, P. J. Collinearity: un examen des méthodes pour y faire face et une étude de simulation évaluant leur performance. Ecography 2013, 36 (1), 27−46.

(20) Phillips, S. J.; Dudík, M. Modélisation des distributions d’espèces avec Maxent: nouvelles extensions et une évaluation complète. Ecography 2008, 31 (2), 161−175.

(21) Munyaka, P. M.; Eissa, N.; Bernstein, C. N.; Khafipour, E.; Ghia, J.-E. Mo1774 Le traitement antibiotique prénatal augmente la susceptibilité de la progéniture à la colite expérimentale: un rôle du microbiote intestinal. PLoS One 2015, 10 (11), e0142536.

(22) Edgar, R. C. UPARSE: séquences OTU très précises à partir de lectures d’amplicons microbiens. Nat. Methods 2013, 10 (10), 996.

(23) Cole, J. R.; Wang, Q.; Cardenas, E.; Fish, J.; Chai, B.; Farris, R. J.; Kulam-Syed-Mohideen, A.; McGarrell, D. M.; Marsh, T.; Garrity, G. M.; et coll. Le projet de base de données ribosomique : alignements améliorés et nouveaux outils pour l’analyse de l’ARNr. Nucleic Acids Res. 2009, 37, D141−D145.

(24) Wang, Y.; Sheng, H.-F.; Lui, Y.; Wu, J.-Y.; Jiang, Y.-X.; Tam, N. F.- Y.; Zhou, H.-W. Comparaison des niveaux de diversité bactérienne dans l’eau douce, les zones humides intertidales et les sédiments marins à l’aide de millions d’étiquettes d’illumine. Appl. Environ. Microbiol. 2012, 78 (23), 8264.

(25) Jiang, X. T.; Peng, X.; Deng, G. H.; Sheng, H. F.; Wang, Y.; Zhou,

H. W.; Tam, F. Y. Illumina Sequencing of 16S rRNA Tag Revealed Spatial Variations of Bacterial Communities in a Mangrove Wetland. Microb. Ecol. 2013, 66 (1), 96−104.

(26) Sanner, M. F. Python: un langage de programmation pour l’intégration et le développement de logiciels. J. Mol. Modélisation graphique. 1999, 17 (1), 57−61.

(27) Caporaso, J. G.; Kuczynski, J.; Stombaugh, J.; Bittinger, K.; Bushman, F. D.; Costello, E. K.; Fierer, N.; Pena, A. G.; Goodrich, J. K.; Gordon, J. I.; Huttley, G. A.; Kelley, S. T.; Chevaliers, D.; Koenig, J. E.; Ley, R. E.; Lozupone, C. A.; McDonald, D.; Muegge, B. D.; Pirrung, M.; Reeder, J.; Sevinsky, J. R.; Turnbaugh, P. J.; Walters, W. A.; Widmann, J.; Yatsunenko, T.; Zaneveld, J.; Knight, R. QIIME permet l’analyse de données de séquençage communautaire à haut débit. Nat. Methods 2010, 7 (5), 335−6.

(28) Schloss, P. D.; Westcott, S. L.; Ryabin, T.; Hall, J. R.; Hartmann, M.; Hollister, E. B.; Lesniewski, R. A.; Oakley, B. B.; Parks, D. H.; Robinson, C. J.; et coll. Présentation de mothur : logiciel open source, indépendant de la plate-forme et soutenu par la communauté pour décrire et comparer les communautés microbiennes. Appl. Environ. Microbiol. 2009, 75 (23), 7537−7541.

(29) Chong, J.; Liu, P.; Zhou, G.; Xia, J. Using MicrobiomeAnalyst pour une analyse statistique, fonctionnelle et méta-analytique complète des données du microbiome. Nat. Protoc. 2020, 15 (3), 799−821.

(30) Phillips, S. J.; Anderson, R. P.; Schapire, R. E. Modélisation de l’entropie maximale des distributions géographiques des espèces. Ecol. Modell. 2006, 190 (3−4), 231−259.

(31) Cai, P. Comprendre l’initiative chinoise « la Ceinture et la Route »; Institut inférieur, 2017.

(32) Zheng, S.; Jiang, X.; Wu, L.; Wang, Z.; Huang, L. Discrimination chimique et génétique des cistanches herba basée sur UPLC-QTOF/MS et codage à barres de l’ADN. PLoS One 2014, 9 (5), e98061.

(33) Liu, W.; Song, Q.; Cao, Y.; Xie, N.; Li, Z.; Jiang, Y.; Zheng, J.; Tu, P.; Song, Y.; Li, J. De la stratégie de métabolomique ciblée basée sur la RMN 1H à la stratégie métabolomique ciblée basée sur la CL-MS pour des comparaisons approfondies de camomille entre quatre espèces de Cistanche. J. Pharm. Biomed. Anal. 2019, 162, 16− 27.

(34) Jiang, Y.; Tu, P.-F. Analyse des constituants chimiques chez les espèces de Cistanche. Journal of chromatography A 2009, 1216 (11), 1970−1979.

(35) Mukhtar, S.; Mirza, B. S.; Mehnaz, S.; Mirza, M. S.; Mclean, J.; Malik, K. A. Impact de la salinité du sol sur la structure microbienne du microbiome de la rhizosphère halophyte. Monde J. Microbiol. Biotechnol. 2018, 34 (9), 136.

(36) Ventilateur, P.; Chen, D.; Lui, Y.; Zhou, Q.; Tian, Y.; Gao, L. Soulager le stress salin dans les plants de tomates à l’aide d’Arthrobacter et de Bacillus megaterium isolés de la rhizosphère de plantes sauvages cultivées sur des terres salines-alcalines. Int. J. Phytorem. 2016, 18 (11), 1113−1121.

(37) Gupta, G.; Parihar, S. S.; Ahirwar, N. K.; Snehi, S. K.; Singh, V. Rhizobactéries favorisant la croissance des plantes (PGPR): perspectives actuelles et futures pour le développement d’une agriculture durable. J. Microb. Biochimie. Technol. 2015, 7 (2), 96−102.

(38) Zohar, S.; Kviatkovski, I.; Masaphy, S. Augmentation de la tolérance et de la dégradation des concentrations élevées de p-nitrophénol par des manipulations de la taille de l’inoculum d’Arthrobacter 4Hβ isolé du sol agricole. Int. Biodétérieur. Biodégrader. 2013, 84, 80−85.

(39) Asaf, S.; Khan, A. L.; Khan, M. A.; Al-Harris, A.; Lee, I.-J. Séquençage complet du génome et analyse du Sphingomo-nas endophyte sp. LK11 et de son potentiel en croissance végétale. 3 Biotech 2018, 8 (9), 389.

(40) Kim, Y.-J.; Lim, J.; Sukweenadhi, J.; Seok, J. W.; Lee, S.-W.; Parc

J. C.; Taizhanova, A.; Kim, D.; Yang, D. C. La caractérisation génomique des rhizobactéries nouvellement isolées Sphingomonas panacis révèle un effet favorisant la croissance des plantes sur le riz. Biotechnol. Bioprocess Eng. 2019, 24 (1), 119−125.

(41) Khan, A. L.; Waqas, M.; Kang, S.-M.; Al-Harris, A.; Hussain, J.; Al-Rawahi, A.; Al-Khiziri, S.; Ullah, I.; Ali, L.; Jung, H.-Y.; et coll. L’endophyte bactérien Sphingomonas sp. LK11 produit des gibbérellines et de l’IAA et favorise la croissance des plants de tomates. J. Microbiol. 2014, 52 (8), 689−695.

(42) Rüger, H.; Fritze, D.; Spröer, C. De nouvelles souches psychrophiles et psychrotolérantes de Bacillus Marinus provenant de sédiments tropicaux et polaires d’eau profonde et une description de l’espèce ont été établies. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2000, 50 (3), 1305−1313.

(43) Gutieŕrez-Mañero, F. J.; Ramos-Solano, B.; Probanza, A. n.; Mehouachi, J. R.; Tadeo, F.; Talon, M. Les rhizobactéries bacillus pumilus et Bacillus licheniformis favorisent la croissance des plantes produisent de grandes quantités de gibbérellines physiologiquement actives. Physiol. Plante. 2001, 111 (2), 206−211.

(44) Viaene, T.; Langendries, S.; Beirinckx, S.; Maes, M.; Goormachtig, S. Streptomyces comme meilleur ami d’une plante? FEMS Microbiol. Ecol. 2016, 92 (8), fiw119.

(45) Edwards, J.; Johnson, C.; Santos-Medellin, C.; Lurie, E.; Podishetty, N. K.; Bhatnagar, S.; Eisen, J. A.; Sundaresan, V. Structure, variation et assemblage des microbiomes associés aux racines du riz. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 2015, 112 (8), E911.

(46) Jolly, W. M.; Running, S. W. Effets des précipitations et du potentiel hydrique du sol sur la phénologie des feuillus de sécheresse dans le Kalahari. Global Change Biology 2004, 10 (3), 303−308.

(47) Yuan, H.-S.; Wei, Y.-L.; Wang, X.-G. Modélisation maximale pour prédire la distribution potentielle de Sanghuang, un groupe important de champignons médicinaux en Chine. Fongique. Ecology 2015, 17, 140−145.

(48) Wittig, R.; König, K.; Schmidt, M.; Szarzynski, J. Une étude du changement climatique et des impacts anthropiques en Afrique de l’Ouest. Environ. Sci. Polluer. Rés. 2007, 14 (3), 182−189.

(49) Rovner, C.; Pierre, H.; Catalań, N.; Drewes, F.; Sommaruga, R.; Peŕez, M. T. Les changements liés au climat des caractéristiques du sol affectent la composition de la communauté bactérienne et la fonction des lacs de haute altitude et de latitude. Global change biology 2017, 23 (6), 2331−2344.

(50) Zhao, Q.; Jian, S.; Nunan, N.; Maestre, F. T.; Tedersoo, L.; Lui, J.; Wei, H.; Tan, X.; Shen, W. La saisonnalité altérée des précipitations a un impact sur les taxons bactériens fongiques dominants mais rares dans les sols forestiers subtropicaux. Biol. Fertil. Sols 2017, 53 (2), 231−245.

(51) Sorensen, P. O.; Germino, M. J.; Feris, K. P. Les réponses des communautés microbiennes à 17 ans de précipitations altérées sont saisonnièrement dépendantes et couplées à des effets co-variables de la teneur en eau sur la végétation et le sol C. Soil Biol. Biochem. 2013, 64, 155−163.

(52) Azatyan, A. Effet des fortes précipitations sur la composition et la dynamique des communautés bactériennes du sol désertique; Université Ben Gourion du Néguev, Institut Jacob Blaustein pour la recherche sur le désert, 2013.

(53) Burgess, T. I.; McDougall, K. L.; Scott, P. M.; Hardy, G. E. S.; Garnas, J. Predictors of Phytophthora diversity and community composition in natural areas across diverse Australian ecoregions. Ecography 2019, 42 (3), 565−577.

(54) Zogg, G. P.; Zak, D. R.; Ringelberg, D. B.; White, D. C.; MacDonald, N. W.; Pregitzer, K. S. Changements de composition et fonctionnels dans les communautés microbiennes dues au réchauffement des sols. Soil Science Society of America Journal 1997, 61 (2), 475−481.

(55) Gao, P.; Xu, W.; Sontag, P.; Li, X.; Xue, G.; Liu, T.; Sun, W. Corrélation des compositions de communautés microbiennes avec des facteurs environnementaux dans les boues activées de quatre usines de traitement des eaux usées municipales à grande échelle à Shanghai, en Chine. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2016, 100 (10), 4663−4673.


Vous pourriez aussi aimer