Effets modulateurs des ROS des polyphénols de l'airelle (Vaccinium Vitis-idaea L.) sur l'hypertrophie des adipocytes obèses et la dysfonction endothéliale vasculaire Partie 1

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Résumé:Le stress oxydatif et la sécrétion dérégulée d'adipocytokines accompagnant le tissu adipeux hypertrophié induisent une inflammation chronique, qui conduit à un dysfonctionnement endothélial vasculaire. La présente étude a examiné la capacité des fractions anthocyanes (ACN) et polyphénols non anthocyanes (PP) des airelles rouges à atténuer l'hypertrophie du tissu adipeux et le dysfonctionnement endothélial à l'aide d'adipocytes 3T3-L1 et de cellules endothéliales de la veine ombilicale humaine (HUVEC). Cette étude a montré que la fraction PP diminuait la génération intracellulaire de ROS dans les adipocytes hypertrophiés en améliorant l'expression des enzymes antioxydantes (SOD2) et en inhibant l'expression des enzymes oxydantes (NOX4, iNOS). De plus, les fractions PP et ACN ont réduit la teneur en triglycérides dans les adipocytes, accompagnées d'une régulation à la baisse de l'expression de gènes lipogéniques tels que aP2, FAS et DAGT1. Le traitement avec les deux fractions a modulé l'expression de l'ARNm et la sécrétion protéique des adipokines clés dans les adipocytes hypertrophiés. L'expression et la sécrétion de leptine et d'adiponectine étaient respectivement régulées à la baisse et à la hausse. De plus, les fractions PP et ACN ont atténué la réponse inflammatoire dans les HUVEC induites par le TNF- - en inhibant l'expression de gènes pro-inflammatoires (IL-6, IL-1) et de molécules d'adhésion (VCAM{{ 14}}, ICAM-1, SELE). Les résultats obtenus suggèrent que la consommation de fruits d'airelles riches en polyphénols peut aider à prévenir et à traiter l'obésité et la dysfonction endothéliale en raison de leurs actions antioxydantes et anti-inflammatoires.

Mots clés:polyphénols; les anthocyanes;airelle; potentiel antioxydant; anti-obésité; anti-inflammatoire;extrait de cistanche tubulosa;3T3-adipocytes Ll ; hypertrophie;adipokines; le dysfonctionnement endothélial

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1. Introduction

L'obésité est un facteur de risque indépendant des maladies cardiovasculaires et l'une des principales causes du risque accru de dyslipidémie, de résistance à l'insuline, d'hypertension et d'athérosclérose chez les adultes et les enfants [1]. Dans l'obésité, le tissu adipeux blanc (WAT) par accumulation excessive de graisse dans les adipocytes hypertrophiés devient dysfonctionnel, ce qui entraîne une inflammation chronique, un stress oxydatif et une sécrétion dérégulée d'adipokine qui contribue au diabète sucré de type 2 et est également associé indépendamment à un dysfonctionnement endothélial coronaire [2 ,3]. Les adipocytes hypertrophiques sont le facteur essentiel liant équilibre énergétique positif, diabète et maladies cardiométaboliques [2]. Le WAT agit comme un organe endocrinien et, via les adipokines et les cytokines sécrétées, assure la communication croisée entre le WAT viscéral ou sous-cutané et les tissus cardiovasculaires.cistanche tubulosa redditLes adipokines telles que la leptine, l'adiponectine et la résistine, les cytokines, le TNF-, l'IL-1, l'IL-6, l'IL-8 et le MCP-1, et les espèces réactives de l'oxygène et de l'azote ( ROS et RNS) affectent le développement de la dysfonction endothéliale par des mécanismes directs et indirects [4]. De plus, le tissu adipeux périvasculaire (PVAT), principalement des personnes obèses, favorise l'inflammation locale et l'altération de la fonction endothéliale.

PVAT contribue à l'homéostasie vasculaire en produisant des composés vasoactifs tels que les adipokines, les ROS et l'oxyde nitrique (NO). En sécrétant une large gamme de molécules bioactives, la PVAT influence la contraction, la prolifération et la migration des cellules musculaires lisses vasculaires [4].

Cistanche peut améliorer l'immunité

Les cellules endothéliales qui tapissent la paroi interne du système vasculaire régulent les fonctions homéostatiques et leur dysfonctionnement est un prédicteur précoce de l'athérosclérose et des maladies cardiovasculaires [5]. Le stress oxydatif contribue à l'activation des cellules endothéliales, les préparant à l'adhésion, à l'infiltration et à l'activation des cellules immunitaires, conduisant à un phénotype inflammatoire de bas grade dans le système vasculaire [5,6]. Les ROS peuvent altérer la relaxation vasculaire dépendante de l'endothélium via une dégradation accrue du NO [6]. La dysfonction endothéliale peut être inversée, ce qui pourrait retarder ou même empêcher la progression de l'athérosclérose et améliorer la fonction artérielle et réduire l'incidence des événements cardiovasculaires [5]. Des études cliniques récentes ont démontré que les thérapies non pharmacologiques et pharmacologiques ciblant l'obésité et la résistance à l'insuline améliorent la fonction endothéliale et réduisent l'inflammation de bas grade [7]. Ces découvertes ont montré l'association entre l'obésité, la résistance à l'insuline et le dysfonctionnement endothélial ; par conséquent, la réduction de la fonction pathologique des adipocytes dans l'obésité devrait être l'objectif de la prévention des maladies cardiovasculaires. Les stratégies thérapeutiques et nutritionnelles qui diminuent le stress oxydatif et l'inflammation dans le tissu adipeux hypertrophié peuvent devenir une cible clé pour prévenir les maladies cardiovasculaires [7].

Les baies sont de riches sources de polyphénols, tels que les flavonols, les acides phénoliques et les anthocyanes, et des études épidémiologiques ont rapporté une association entre une augmentation de la consommation de baies et une diminution de l'obésité et des maladies cardiovasculaires ]8]. Les baies sont connues comme des antioxydants naturels et, en raison de leur potentiel antioxydant élevé, elles sont de plus en plus souvent appelées aliments fonctionnels naturels [9]. Les airelles sont classées comme "superfruits", étant particulièrement riches en antioxydants tels que les vitamines C, A et E (tocophérol) et les polyphénols [10]. Des études in vitro et in vivo ont indiqué divers effets bénéfiques pour la santé des airelles rouges telles que des activités anti-inflammatoires [11], antioxydantes [11] et antiprolifératives [8,9]. De plus, il a été démontré que les airelles rouges préviennent l'obésité induite par l'alimentation et l'inflammation de bas grade chez les animaux diabétiques [12]. Notre étude précédente a montré le potentiel anti-inflammatoire de l'extrait aqueux d'airelle lyophilisée [11]. L'extrait a régulé l'expression des gènes pro-inflammatoires (IL-6, MCP-1 et IL-1) et anti-inflammatoires (IL-10) dans le TNF enflammé{{20} } induit des adipocytes 3T3-L1 et supprime la réponse inflammatoire dans les macrophages RAW 264.7 activés en régulant à la baisse l'expression de médiateurs pro-inflammatoires (TNF-, IL-1, IL-6, MCP{{30 }}, iNOS, COX-2). De plus, des effets antioxydants significatifs ont été observés dans les adipocytes enflammés traités avec l'extrait de fruit d'airelle. L'accumulation intracellulaire de ROS a diminué en raison de l'expression accrue des enzymes de défense antioxydantes (SOD, catalase, GPx) et de l'enzyme pro-oxydante inhibée (NADPH oxydase 4) [11].

La présente étude a examiné la capacité de la fraction anthocyanine (ACN) du fruit de l'airelle rouge et de la fraction polyphénol non anthocyanine (PP) à prévenir et à traiter l'obésité hypertrophique et la dysfonction endothéliale imitées dans les modèles in vitro. L'effet des fractions ACN et PP sur les voies moléculaires du stress oxydatif, de l'inflammation et de la sécrétion dérégulée d'adipokine a été analysé dans des adipocytes obèses hypertrophiés 3T3-L1. Le potentiel protecteur contre le dysfonctionnement endothélial a été évalué à l'aide de cellules endothéliales de veine ombilicale humaine (HUVEC) induites par le TNF-x.

2. Matériels et méthodes

2.1.Préparation des fractions de polyphénols anthocyanes et non anthocyanes

Le fruit congelé de l'airelle (Vaccinium Vitis-idea L.) obtenu auprès de la société DANEX (PHU "DANEX", Wielen, Pologne) a été homogénéisé en pulpe de fruit, qui a ensuite été congelé à -80 degré et soumis à lyophilisation selon la procédure décrite précédemment[11]. La poudre de fruits a été mise en suspension dans une solution aqueuse d'acide acétique 0,75 % (v/v). La proportion de solides (g) et d'agent d'extraction (mL) était de 1:10. Après mélange dans un mélangeur vortex pendant 30 secondes, la suspension a été placée dans un bain sonique (5 min, 20 degrés). Encore une fois, le mélange d'extraction a été agité dans un mélangeur vortex pendant 30 secondes et laissé reposer à 20 degrés.

Après 10 min, l'échantillon a été centrifugé à 3600 x g (10 min, 20 degrés) et le surnageant obtenu a été collecté. L'agent d'extraction frais a été versé dans les solides restants pour démarrer la deuxième étape d'extraction. La procédure de la deuxième étape était la même que la première. Les extraits des deux étapes ont été combinés et centrifugés à 12,000×g pour éliminer les minuscules résidus de fruits.

Dans l'étape suivante de préparation de la fraction, l'élimination des sucres et des acides organiques de l'extrait a été effectuée. La séparation a été réalisée avec le système de chromatographie AKTA Explorer 100 Air(GE Healthcare, Chicago, IL, USA) équipé d'une colonne en verre XK 26/20 (GE Healthcare, Chicago, IL, USA ). La colonne était remplie de 40 ml de résine adsorbante macroporeuse Amberlite XAD-7 HP (DuPont, Wilmington, DE, USA). Avant l'infection de la colonne, la solution (50 ml de l'extrait obtenu à l'étape d'extraction) a été filtrée à l'aide d'une membrane de filtre à seringue de taille de pore de 0,45-um (Millex-HV Durapore PVDF) avec préfiltre en fibre de verre (Merck Millipore, Burlington, MA, États-Unis). Trois éluants ont été appliqués : A - acide formique à 5 % (v/o), B - méthanol et C - acide formique à 0,1 % (u/o). Les solutions d'acide formique ont été préparées en mélangeant une quantité appropriée d'acide formique avec de l'eau désionisée. Le débit d'éluant a été ajusté à 5 mL/min. Pendant la séparation, le programme chromatographique suivant a été employé : Équilibrage de la colonne : 95 % A, 5 % B, 3 CV (volume de la colonne) ; injection d'échantillon-50 mL de l'extrait ; lavage des substances non liées-1 : 100 % C, 6 CV ; lavage des substances non liées-2 : 100 % A, 1 CV ; élution : 20 % A, 80 % B, 5 CV ; lavage de la colonne : 100 % B, 2,5 CV.

L'effluent entier de l'étape d'élution qui a montré l'absorbance (contrôlée à λ{{0}}, 320 et 520 nm) a été évaporé à sec à 30 degrés à l'aide d'un évaporateur rotatif (Laborota 4003 HB control, Heidolph, Allemagne). Les solides ont été dissous dans une solution aqueuse d'acide acétique à 0,75 % (o/o). La solution a été transférée dans des flacons en verre et congelée à -85 degré, puis placée dans un lyophilisateur Beta {{8 }} (Martin Christ, Allemagne). La lyophilisation a été effectuée pendant 48 h. Le séchage proprement dit a eu lieu sous la pression de 10 Pa pendant 40 h (20 h à une température de stockage de -15 degré et 20 h à 15 degrés). Le séchage final a été effectué à une température de 22 degrés pendant 8 h sans contrôle de la pression. Les préparations solides ont été stockées dans des flacons hermétiquement fermés sous atmosphère d'azote à -85 C.

Le contenu solide du flacon a été dissous dans la solution aqueuse d'acide formique à 5 % (o/o) et filtré à l'aide d'un filtre à pores 0.45-μm （Merck Millipore）. La séparation des anthocyanes des autres composés polyphénols des échantillons a été réalisée à l'aide d'un chromatographe AKTA Explorer 100 Air, équipé d'un détecteur UV/VIS et d'une colonne Agilent Zorbax SB C18 (250 x 21,2 mm). La séparation a été effectuée à 20 degrés. Le débit de la phase liquide était de 21 mL/min. Deux éluants ont été appliqués : A-5 % (v/v) d'acide formique dans de l'eau et du B-méthanol. Après l'équilibrage de la colonne (95 % A, 5 % B, 3 CV) et l'injection de l'échantillon dans un volume de 2 ml, la séparation a été effectuée dans un gradient complexe. Le programme de gradient était le suivant : 5 % B-0.5 CV ;20 % B-2 CV ;20 % B-1.2 CV ;30 % B-3. 5 CV ;30 % B-1.2CV ;45 % B-3.5 CV ;45 % B-1.2CV ;100 % B-2.5 CV ;100 pourcentage B-2.5 CV. L'effluent avec une absorbance à λ=520 nm a été collecté et désigné comme une fraction d'anthocyanine （ACN）. Le flux sortant montrant l'absorbance à 入=320 nm a également été recueilli et désigné comme la fraction de polyphénols non anthocyanes (PP). Les deux fractions ont été évaporées, dissoutes dans une solution aqueuse d'acide acétique, lyophilisées et stockées comme décrit ci-dessus. Tous les produits chimiques utilisés pour préparer les fractions ACN et PP ont été achetés auprès de Sigma-Aldrich (Merck Group, Poznan, Pologne).

2.2.Identification et quantification des polyphénols dans les fractions ACN et PP

La composition en polyphénols des fractions ACN et PP a été analysée par la méthode HPLC-DAD-ESI-MS sur un système HPLC Agilent série 1200 (Agilent Technologies, Inc., Santa Clara, CA, USA) équipé d'un détecteur à matrice de photodiodes G1315D et couplé en ligne avec un système MS à temps de vol Agilent 6224. Les séparations chromatographiques ont été effectuées sur une colonne C18 de 150 × 2,1 mm, 3- μm (Advanced Chromatography Technologies, Aberdeen, Écosse). Une étude précédemment publiée détaille les conditions de séparation (phase mobile, programme d'élution par gradient, débit, volume d'injection de l'échantillon)[11].

Les chromatogrammes HPLC ont été enregistrés à 280 325 355 et 520 nm, recommandés pour détecter les flavan-3-ols, les dérivés de l'acide hydroxycinnamique, les flavonols et les anthocyanes, respectivement.

Les composés polyphénoliques des fractions ACN et PP ont été quantifiés en équivalents de cyanidine-3-O-glucoside (anthocyanes), catéchine ((épi)catéchine et procyanidines), 4-acide hydroxybenzoïque (dérivés de l'acide hydroxybenzoïque), acide férulique (dérivé de l'acide férulique), acide chlorogénique (3- acide O-caféoylquinique), acide p-coumarique (dérivé de l'acide coumarique), acide trihydroxybenzoïque-acide gallique (dérivés de l'acide benzoïque et de l'arbutine) et quercétine (glucosides de quercétine) . Tous les échantillons ont été injectés en triple à partir de solutions préparées indépendamment des fractions ACN et PP.

Après avoir traversé le détecteur DAD, l'éluat de la colonne a été dirigé vers le système MS équipé d'une source d'ionisation par électropulvérisation (ESI) fonctionnant en mode ions positifs et ions négatifs. Un article publié précédemment présente les paramètres ESI-MS utilisés pour identifier les composés phénoliques dans les fractions ACN et PP [11]. Le contrôle de l'instrument, la collecte de données et l'analyse ont été réalisés avec le logiciel MassHunter B.04.00 (Agilent Technologies, Inc., Santa Clara, Californie, États-Unis). Sigma-Aldrich a fourni des étalons phénoliques et d'autres réactifs pour l'analyse HPLC/DAD/MS.

2.3. Culture et traitement des adipocytes 3T3-L1

Des cellules préadipocytes de souris 3T3-L1 ont été obtenues auprès de l'American Type Culture Collection (ATCC, CL-173). Les cellules ont été cultivées à 37 degrés sous 5 % de CO, l'atmosphère dans le milieu d'aigle modifié de Dulbecco (DMEM) (Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne) avec 10 % (o/o) de sérum bovin fœtal (FBS) (Gibco, Thermo Fisher Scientific Polska, Varsovie, Pologne)supplémentation. Les préadipocytes 3T3-L1 ont été soumis au processus de différenciation selon le protocole décrit précédemment [11]. Les préadipocytes ont été ensemencés à une densité de 2,5 × 104cellules/cm² dans des plaques 12-puits et cultivés jusqu'à ce qu'ils atteignent la confluence. Ensuite, ils ont été stimulés pendant 2 jours par un mélange de différenciation contenant 0,25 μM de dexaméthasone (Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne), 0,5 mM 3-isobutyl-1-méthylxanthine （Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne） et 1 μM d'insuline (Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne) dans du DMEM avec 10 % de FBS. Le milieu a été remplacé par du DMEM complété par 10 % de FBS et 1 μM d'insuline. Après 2 jours, le milieu de culture a été remplacé par du DMEM additionné de 10 % de FBS et rafraîchi à des intervalles de 2-jours jusqu'à l'analyse au jour 12.3T3-Les adipocytes L1 ont été traités pendant 24 h avec des fractions ACN et PP à concentrations de 5, 10 et 20 ug/mL.

2.4. Culture et traitement HUVEC

Des cellules endothéliales de veine ombilicale humaine (HUVEC) ont été obtenues auprès de l'ATCC (CRL{{0}}). Les HUVEC ont été cultivées dans du milieu F-12K (ATCC) additionné de 10 % de FBS (Gibco), d'un supplément de croissance de cellules endothéliales provenant de tissu neural bovin (30 ug/mL) (Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne) et d'héparine ( 100ug/mL)(Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne). Les HUVEC ont été ensemencées à une densité de 6 × 103 cellules / cm² sur des plaques à puits 24- recouvertes d'une solution de collagène de queue de rat (Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne). Ensuite, des cultures de 24- h de HUVEC ont été exposées pendant 3 h à des fractions ACN et PP à des concentrations de 0,1, 1 et 10 ug/mL, puis traitées avec du TNF- (10 ng/mL) (Sigma-Aldrich, Poznan , Pologne) pendant 3 h supplémentaires pour induire une inflammation.

2.5. Test de viabilité cellulaire

La viabilité des adipocytes 3T3-L1 hypertrophiés et des HUVEC induites par le TNF- -, non traitées et traitées avec des fractions ACN et PP, a été analysée en appliquant le MTT(3-(4,{{7 }}diméthylthiazol-2-yl)-25-bromure de diphényltétrazolium) (Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne) en suivant la procédure décrite précédemment[13]. De faibles concentrations de fractions ACN et PP appliquées pour le traitement cellulaire n'ont pas affecté la couleur du milieu et la lecture de l'absorbance dans le test MTT.

2.6.Détermination de la production intracellulaire de ROS

La génération de ROS dans les adipocytes 3T3-L1 a été mesurée à l'aide du test nitro blue tetrazolium (NBT) basé sur la procédure décrite précédemment [14]. Après 90-min d'incubation dans une solution de 0,2 % de NBT (Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne), les cellules ont été lavées avec une solution saline tamponnée au phosphate et fixées avec du méthanol. Après extraction du formazan à l'aide de KOH et de DMSO, l'absorbance a été lue à 620 nm (Tecan Infinite M200, Tecan Group Ltd., Männedorf, Suisse).

2.7.Mesure du contenu en lipides intracellulaires

L'effet des fractions PP et ACN sur la teneur en lipides des adipocytes hypertrophiés a été déterminé par la méthode de coloration Oil Red O (Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne) décrite précédemment [13] et par la mesure des triglycérides totaux (TG) à l'aide du kit d'analyse d'adipogenèse ( Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne) conformément aux instructions du fabricant. La teneur intracellulaire en TG a été déterminée par un dosage enzymatique. Un produit colorimétrique correspondant au TG présent a été mesuré à 570 nm. La concentration de TG a été calculée sur la base de la courbe tracée pour l'étalon de TG.

2.8. Extraction d'ARN et analyse PCR en temps réel

Les adipocytes 3T3-L1 et les HUVEC ont été traités avec TRI-Reagent (Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne) pour l'isolement total de l'ARN. La synthèse d'ADNc du premier brin a été réalisée avec 1 ug d'ARN total à l'aide d'un kit de synthèse d'ADNc du premier brin Transcriptor (Roche Diagnostics, Pologne) sur la base des instructions du fabricant. La quantification de l'expression génique a été réalisée à l'aide d'un système de PCR en temps réel (système de PCR en temps réel SmartCycler DX Cepheid, Sunnyvale, CA, États-Unis). Le mélange PCR dans un volume final de 25 μL comprenait un échantillon d'ADNc (1 μL), spécifique vers l'avant et amorces inverses (5 μM/1 μL) et SYBR⑧ Select Master Mix (12,5 μL) (Life Technologies, Carlsbad, CA, USA). Les séquences d'amorces sont présentées dans le tableau S1. Les conditions de cycle PCR comprenaient une dénaturation initiale à 94 degrés pour 10 min, suivi de 40 cycles de PCR : 40 s à 95 degrés, 30 s à 59 degrés C et 30 s à 72 degrés. L'expression relative des gènes a été calculée à l'aide de la méthode 2-△ACT. Les niveaux de transcription ont été normalisés en -actine. pour les adipocytes 3T3-L1 et GAPDH pour les HUVEC. L'expression relative de l'ARNm a été exprimée sous forme de changement de pli par rapport aux cellules témoins (non traitées). Toutes les réactions ont été réalisées en triple exemplaire.

2.9.Détermination de la production d'adipokines

Les concentrations de leptine et d'adiponectine ont été mesurées avec des kits ELISA (Sigma-Aldrich, Poznan, Pologne) en suivant les protocoles du fabricant. La quantification a été effectuée en utilisant l'étalonnage des normes. Chaque standard et échantillon a été dosé en triple exemplaire. Les coefficients de variabilité inter-essai et intra-essai ont été calculés respectivement à 12,5 % et 9,3 % pour la leptine et à 11,2 % et 7,9 % pour l'adiponectine.

2.10.Analyse statistique

L'analyse statistique a été réalisée à l'aide du logiciel STATISTICA version 13.3 (Stat-soft, Inc., Tulsa, OK, USA). Une analyse de variance unidirectionnelle (ANOVA) et le test post hoc de Tukey ont été appliqués pour estimer les différences entre les valeurs moyennes de plusieurs groupes. Le test de Levene a vérifié l'hypothèse d'égalité des variances. La signification statistique a été fixée à p<>

3. Résultats et discussion

3.1. Composition des polyphénols dans les fractions ACN et PP de l'airelle rouge

L'étude a porté sur deux préparations polyphénoliques séparées du fruit de l'airelle rouge : la fraction anthocyanique ACN et la fraction non anthocyanique PP. Les profils de polyphénols dans les fractions ACN et PP déterminés sur la base de l'analyse HPLC-DAD-ESI-MS sont présentés dans le tableau 1. La fraction ACN se composait de trois principaux composés anthocyaniques, contenus dans l'extrait de fruit d'airelle [11], qui sont des dérivés à base de cyanidine, y compris 3-O-galactoside (82,5 %),3-O-arabinoside (13,0 %) et 3-O-glucoside (4,5 %) (Tableau 1A) .

Tableau 1. Les composés identifiés dans la fraction d'anthocyanine (ACN) (A) et la fraction de polyphénol non anthocyanique (PP) (B) ont été obtenus à partir de fruits d'airelle.

The purity of ACN preparation was evaluated at 97.3%; among the non-anthocyanin constituents, 1-O-Benzoyl-β-glucose was identified by HPLC-ESI-MS analysis in positive ion mode (precursor ion at m/z307.079, production at m/z 185.0432). The PP fraction contained polyphenolic compounds belonging to three predominant groups: Flavan-3-ols, hydroxycinnamic acid derivatives, and flavonols, which accounted for 40.4%, 22.8%, and 31.0%, respectively. In addition, the anthocyanin compounds' residue (5.8%)was detected in the PP fraction with cyanidin-3-O-galactoside as dominant anthocyanin, cyanidin-pentoxide, and cyanidin 3-O-(6"-acetyl)-glucoside (Table 1B), trace amounts of which have been identified previously in the original lingonberry fruit extract [11]. In the PP fraction, the following polyphenols were quantified in a significant amount (>5 %) : procyanidines de type A et B, catéchine, 3-acide O-caféoylquinique, acide férulique-hexoside, quercétine et ses dérivés (3-O-galactoside,3-O- arabinofuranoside,3-O-rhamnoside). Le tableau 1B montre les données spectrales de masse de tous les composés polyphénoliques provisoirement identifiés dans la fraction PP des fruits de l'airelle.

Cet article est extrait de Nutriments 2021, 13, 885 7