Abstrait

La cistanche deserticola, connue sous le nom de « Rou‑Cong‑Rong », est une plante médicinale et comestible homologue bien connue appartenant à la famille des Orobanchaceae. Cette étude a systématiquement évalué les profils de composants actifs et la capacité antioxydante in vitro de différentes parties tissulaires (segments supérieur, moyen et inférieur) de deux variétés de Cistanche dépendantes de l'hôte, à savoir le Cistanche parasité par Haloxylon (HC, hôte Haloxylon ammodendron) et le Cistanche parasité par Tamarix (TC, hôte Tamarix ramosissima). Toutes les matières premières ont été récoltées dans le comté de Cele, préfecture de Hotan, Xinjiang, Chine.

Des différences significatives entre variétés et tissus intra-plantes ont été observées pour les substances bioactives. Pour le Cistanche parasité par Tamarix, les teneurs en polyphénols totaux, flavonoïdes totaux, sucres totaux et verbascoside présentaient un gradient décroissant : partie inférieure > partie médiane > partie supérieure. Les polyphénols totaux (38,35 mg GAE/g DW) et les flavonoïdes totaux (35,61 mg RE/g DW) du segment inférieur TC ont atteint respectivement 2,47 et 10,95 fois par rapport au tissu inférieur HC. Le segment supérieur du Cistanche parasité par Haloxylon contenait la concentration d'échinacoside la plus élevée (92,93 mg/g DW) parmi tous les échantillons testés. La teneur totale en triterpénoïdes dans les tissus inférieurs des deux variétés était statistiquement plus élevée que dans les tissus moyens et supérieurs (P<0.05), with HC lower part reaching peak value of 6.75 mg OAE/g DW.

Les deux variétés possédaient des performances antioxydantes remarquables en matière d’élimination des radicaux libres. Les segments inférieurs ont fourni une puissance antioxydante supérieure : les valeurs DPPH IC₅₀ étaient de 7,15 mg/mL (HC-inférieur) et de 5,95 mg/mL (TC-inférieur) ; Les valeurs ABTS⁺ IC₅₀ ont atteint 5,19 mg/mL (HC-inférieur) et 3,28 mg/mL (TC-inférieur). L'analyse de corrélation de Pearson a révélé une corrélation significativement négative entre les indicateurs d'antioxydants IC₅₀ et les niveaux de teneur en polyphénols totaux, en flavonoïdes totaux, en proanthocyanidines, en sucres totaux et en verbascoside.

Les résultats expérimentaux confirment que les segments supérieurs du Cistanche parasité par Haloxylon sont riches en échinacoside ; les segments inférieurs du Cistanche parasité par Tamarix accumulent en abondance des polyphénols, des flavonoïdes, des saccharides et du verbascoside. Cet ensemble de données fournit un soutien théorique pratique pour la formulation de normes de qualité, le classement des matières premières et le développement de produits alimentaires fonctionnels approfondis pour la Cistanche deserticola cultivée au Xinjiang.

Mots-clés: Cistanche désertique; variété hôte; partie de tissu; composés bioactifs; activité antioxydante in vitro ; plante médicinale comestible

1. Présentation

Cistanche désertiqueest une plante herbacée parasite non photosynthétique obligatoire documentée dans la pharmacopée chinoise, et sa tige succulente et écailleuse séchée sert de matière première tonique traditionnelle pour les industries des compléments alimentaires et des plantes médicinales. Deux écotypes commercialement importants poussent largement dans les zones désertiques du Xinjiang : l’un parasite les racines desHaloxylon ammodendron(Chenopodiaceae, Haloxylon‑host Cistanche), et l'autre infecte les systèmes racinaires desTamarix ramosissima(Tamaricaceae, Tamarix‑hôte Cistanche)Google pour....

En tant qu'espèce parasite tolérante au stress, le Cistanche peut survivre dans les sols salins et alcalins, les déserts fluviaux et les habitats sableux arides. La région Hotan du Xinjiang représente l’une des principales bases de culture artificielle du Cistanche en Chine. La production annuelle de Cistanche cultivée localement dépasse 8 000 tonnes, répondant à plus de 90 % de la demande du marché intérieur de la Chine continentale.

Les investigations phytochimiques modernes démontrent que les glycosides phényléthanoïdes, les polysaccharides, les triterpénoïdes, les iridoïdes et les substances polyphénoliques constituent les principales fractions bioactives du Cistanche deserticola. Les glycosides phényléthanoïdes (échinacoside et verbascoside comme molécules marqueurs représentatives) ont été validés pour exercer de multiples fonctions biologiques : antioxydant, régulation du microbiote intestinal, hépatoprotection, effets neuroprotecteurs, immunomodulation, bioactivités antitumorales et anti-inflammatoires dans des modèles expérimentaux cellulaires et animaux. additifs. La demande du marché pour la cistanche cultivée de haute qualité continue d’augmenter d’année en année.

Les ressources sauvages de Cistanche diminuent, limitées par la diminution de la population de plantes hôtes sauvages. Les plantations artificielles à grande échelle sont devenues la principale voie pour satisfaire la consommation industrielle de matières premières. Néanmoins, des incohérences de qualité existent largement entre les lots commerciaux de Cistanche. L’environnement de croissance, l’état minéral du sol, la communauté microbienne de la rhizosphère, le type de plante hôte et les différents segments de tissus d’une seule tige charnue entraînent tous des fluctuations importantes de la concentration de substances bioactives. Une telle hétérogénéité de la qualité crée des obstacles au classement uniforme, au contrôle de la qualité et à l'exploitation en aval des matières premières Cistanche.

La littérature antérieure a fait état de variations inter-origines des composants de Cistanche ; cependant, les données comparatives systématiques couvrant deux principales variétés cultivées au Xinjiang sur les segments supérieurs, moyens et inférieurs de la tige restent insuffisantes pour une référence industrielle. Dans ce travail de recherche, des Cistanche parasités par Haloxylon et des Cistanche parasités par Tamarix collectés dans le comté de Cele (Hotan, Xinjiang) ont été adoptés comme sujets de recherche. Nous avons quantifié plusieurs biocomposés clés et évalué la capacité antioxydante du DPPH et de l'ABTS⁺ à éliminer les radicaux libres pour chaque segment tissulaire. La corrélation entre les constituants chimiques et les performances antioxydantes a ensuite été calculée. Les résultats visent à fournir une base empirique pour le tri des matières premières, l’établissement de spécifications et le développement de produits fonctionnels de grande valeur pour la Cistanche deserticola cultivée au Xinjiang.

2. Matériels et méthodes

2.1 Matériel végétal, réactifs chimiques et instruments de laboratoire

Des échantillons frais de Cistanche hôte Haloxylon et de Cistanche hôte Tamarix provenaient du comté de Cele, Hotan, Xinjiang, Chine. Des échantillons intacts sans lésion mécanique de surface ont été sélectionnés. Chaque tige charnue entière a été divisée manuellement en trois sections égales : segment supérieur, segment intermédiaire et segment inférieur. Les échantillons segmentés ont été lyophilisés par lyophilisateur sous vide, pulvérisés, tamisés à travers un tamis de 60 mailles, scellés et conservés au réfrigérateur à 4 degrés pour une analyse chimique ultérieure.

Des étalons de référence authentiques : l'acide gallique, la rutine, la proanthocyanidine, l'acide oléanolique, le D-glucose, le verbascoside, l'échinacoside ont été achetés auprès de Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd. Le méthanol et l'acide formique de qualité chromatographique ont été fournis par Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. D'autres produits chimiques de qualité analytique étaient des produits nationaux disponibles dans le commerce.

Principaux instruments d'analyse : balance d'analyse électronique Mettler‑Toledo PL203/01 ; Centrifugeuse réfrigérée à grande vitesse Eppendorf TGL‑16M ; Bain-marie thermostatique DK‑98‑1 ; Lecteur de microplaques Tecan M200 ; Chromatographie liquide haute performance (HPLC) Agilent‑1260 Infinity II ; Lyophilisateur sous vide FD‑1A‑50 ; Spectrophotomètre UV-Vis Purkinje TU‑1810 ; dispositif de bain de nettoyage à ultrasons.

2.2 Protocoles analytiques expérimentaux

Toutes les expériences d’extraction et de détection ont été mises en œuvre en triple répétition biologique. Les méthodologies de mesure ont été référencées à des protocoles précédemment publiés avec des ajustements mineurs.

2.2.1 Détermination de la teneur totale en polyphénols

Le test colorimétrique Folin‑Ciocalteu a été appliqué pour la quantification des polyphénols totaux. En bref, 0,3 g d'échantillon de poudre de Cistanche mélangé à 30 ml de solution d'éthanol à 70 %. L'extraction par ultrasons a été réalisée sous une puissance de 250 W pendant 30 min. Après centrifugation à 4 000 tr/min pendant 10 min, le surnageant a été dilué 10 fois comme solution d'échantillon de travail. Prélever 1,0 mL de solution échantillon, ajouter 5,0 mL d'eau distillée plus 1,0 mL de réactif Folin‑Ciocalteu. Après homogénéisation, ajouter 3,0 mL de solution aqueuse de carbonate de sodium à 7,5 %. Conserver le mélange réactionnel dans un environnement sombre pendant 30 min. Enregistrez la lecture de l’absorbance à la longueur d’onde de 760 nm. Formule de calcul de la courbe d'étalonnage : \\(y=0.018x-0,0079\\), \\(R^2=0.9969\\). Les résultats finaux ont été exprimés en milligrammes d’équivalent acide gallique par gramme de poids sec d’échantillon (mg GAE/g DW).

2.2.2 Détermination de la teneur totale en flavonoïdes

La méthode colorimétrique au nitrite de sodium et au nitrate d'aluminium a été utilisée . 1.0 ml d'échantillon liquide ont été mélangés avec 0,4 ml de solution de NaNO₂ à 5 %, incubés pendant 6 minutes. Ajouter 0,4 mL de solution Al(NO₃)₃ à 10 % et maintenir encore 6 min. Injectez ensuite 4,0 ml de solution de NaOH à 4 %, complétez avec de l'éthanol à 70 % jusqu'à un volume total de 10 ml. Reposez-vous 10 min avant lecture spectrophotométrique à 505 nm. Courbe standard : \\(y=0.0069x-0,0024\\), \\(R^2=0.9991\\). Les résultats ont été présentés en mg d'équivalent rutine/g de poids sec (mg RE/g DW).

2.2.3 Détermination de la teneur en sucre total

La méthode colorimétrique à l’acide phénol-sulfurique a été adoptée. La solution échantillon a été diluée à une concentration de 0,1 mg/mL avec de l’eau distillée. Prélevez 2,0 mL de solution échantillon, incorporez 1 mL de réactif phénolique, versez lentement 5,0 mL d’acide sulfurique concentré. Mélangez au vortex et chauffez au bain-marie à 100 degrés pendant 30 minutes. Refroidir à température ambiante, mesurer l'absorbance à une longueur d'onde de 490 nm, eau distillée comme référence vierge. Courbe d'étalonnage \\(y=0.0082x-0,002\\), \\(R^2=0.9993\\). Résultats : mg équivalent dextrose par gramme de poids sec (mg DE/g DW).

2.2.4 Détermination de la teneur totale en triterpénoïdes

La solution échantillon 0,4 ml a été transférée dans un tube à essai. Le solvant a été évaporé dans un bain d'eau chaude, puis refroidi. Ajouter le réactif mélangé contenant 0,4 ml de solution d'acide vanilline-glacial-acétique à 5 % et 1,6 ml d'acide perchlorique. Incuber 15 min au bain-marie à 60 degrés. Après refroidissement, ajouter 5,0 mL d'acétate d'éthyle, homogénéiser et laisser reposer 15 min. L'absorbance a été lue à 560 nm. Formule de régression standard \\(y=0.048x+0.00766\\), \\(R^2=0.9963\\). Sortie des données : mg d'équivalent acide oléanolique / g de poids sec (mg OAE/g DW).

2.2.5 Détermination de la teneur en proanthocyanidines

Procédure spectrophotométrique à la vanilline et à l'acide chlorhydrique. Prendre 0,5 mL de solution échantillon ; ajouter 3,0 mL de solution de vanilline-méthanol à 4 % et 1,5 mL d'acide chlorhydrique concentré. Réagir 10 min à température ambiante ; détecter la valeur d’absorbance à 500 nm. Courbe standard : \\(y=0.422x+0.0812\\), \\(R^2=0.9993\\). Unité : mg d'équivalent proanthocyanidine / g de poids sec (mg PCE/g DW).

2.2.6 Quantification HPLC de l'échinacoside et du verbascoside

Les paramètres de détection HPLC étaient conformes à la monographie Cistanche de la pharmacopée chinoise. Colonne chromatographique : Colonne analytique Alltima C₁₈ (4,6 mm × 250 mm, 5 µm). Système à phase mobile : phase mobile A (méthanol), phase mobile B (solution aqueuse d'acide formique à 0,1 %). Procédure d'élution par gradient : 0 à 17 min, 26,5 % A /73,5 % B ; 17 à 20 minutes, 29,5 % A /70,5 % B ; 20–37 min, 29,5 % A /70,5 % B. Température de la colonne maintenue à 25 degrés ; débit réglé à 1,00 ml/min ; Longueur d'onde de détection UV 330 nm ; volume d'injection 10 μL. Courbe d'étalonnage de l'échinacoside : \\(y=17395.5x-11283.4\\), \\(R^2=0.9999\\). Courbe d'étalonnage du verbascoside : \\(y=13663.1x-15072.6\\), \\(R^2=0.9998\\).

2.2.7 Évaluation de l'activité antioxydante in vitro

L'échantillon de poudre 1,2 g a été extrait avec un solvant éthanol absolu ; Extraction par ultrasons de 250 W pendant 40 min, centrifugée à 4 500 tr/min pendant 15 min. La solution mère surnageante (40 mg/mL) a été diluée en série dans des gradients de concentration (3 mg/mL, 5 mg/mL, 10 mg/mL, 20 mg/mL, 30 mg/mL, 40 mg/mL) pour les tests d'antioxydants.

Test de détection des radicaux libres DPPH: Dans une microplaque de 96 puits, 50 μL de solution échantillon mélangée à 200 μL de solution de travail DPPH. Homogénéiser, incuber 30 min dans l'obscurité, mesurer la valeur d'absorbance à 517 nm. Formule du taux de suppression des radicaux DPPH :

\\(DPPH\\ radical\\ scavenging\\ rate(\\%)=\\left(1-\\frac{A_1-A_2}{A_0}\\right)×100\\) Où : \\(A_0\\)=absorbance de l'éthanol plus la solution DPPH ; \\(A_1\\)=absorbance de la solution échantillon plus le réactif DPPH ; \\(A_2\\)=absorbance de l'eau distillée mélangée à la solution échantillon. Une régression non linéaire a été utilisée pour calculer la valeur IC₅₀ (concentration demi-inhibitrice). Une valeur IC₅₀ inférieure correspond à une capacité d’élimination des radicaux plus forte.

Test ABTS⁺ de piégeage des radicaux cations: Liqueur mère ABTS (7 mmol/L) mélangée à parts égales avec une solution de persulfate de potassium à 2,45 mmol/L, conservée dans l'obscurité pendant 12 à 16 h pour générer une solution mère de radicaux ABTS⁺. Avant la mesure, diluez la solution mère avec de l'éthanol anhydre jusqu'à ce que l'absorbance atteigne 0,7 ± 0,20 sous une longueur d'onde de 735 nm, cela a été défini comme liquide de travail ABTS⁺. Dans le puits de la microplaque : 50 μL de solution échantillon + 200 μL de solution de travail ABTS⁺. Réagir 10 min à température ambiante, enregistrer l'absorbance à 735 nm. Formule de calcul du taux de piégeage des radicaux ABTS⁺ :

\\(ABTS^+ radical\\ scavenging\\ rate(\\%)=\\left(1-\\frac{A_1-A_2}{A_0}\\right)×100\\) La valeur IC₅₀ pour le piégeage des radicaux ABTS⁺ a été calculée en conséquence.

2.3 Traitement des données statistiques

Tous les ensembles de données ont été exprimés au format « valeur moyenne ± écart type ». Le logiciel GraphPad Prism 9.5 a été appliqué pour la visualisation par traçage ; SPSS Statistics 27 a été utilisé pour le calcul statistique. Une analyse de variance unidirectionnelle (ANOVA) a été réalisée pour comparer le niveau de signification des différences intergroupes ; P.<0.05 was regarded as statistically significant difference threshold. Pearson correlation coefficient was calculated for correlation analysis between bio‑constituents and antioxidant IC₅₀ parameters.

3. Résultats et analyse

3.1 Variation de la teneur en polyphénols totaux

Les polyphénols totaux représentent des métabolites phénoliques secondaires vitaux dotés d'un potentiel antioxydant. Il existait une différence intra-variété significative entre les différents segments de tissus pour le Cistanche hôte Haloxylon (P<0.05). Upper segment of HC delivered highest total‑polyphenol value (27.90 mg GAE/g DW), middle segment exhibited lowest concentration (14.43 mg GAE/g DW). For Tamarix‑host Cistanche, statistical difference among three stem segments was not obvious. Generally speaking, TC accumulated higher total‑polyphenol level compared to HC. Total‑polyphenol value of TC upper, middle and lower tissues reached 1.36‑fold, 2.66‑fold and 2.47‑fold relative to corresponding HC tissue segments respectively.

3.2 Variation de la teneur totale en flavonoïdes

La concentration en flavonoïdes totaux a montré un gradient important dépendant des tissus pour le Cistanche hôte du Tamarix (P<0.05). Lower‑segment total‑flavonoid content of TC reached 35.61 mg RE/g DW, which was 1.66‑fold of middle segment and 3.30‑fold of upper segment of TC. Total‑flavonoid readings of HC upper, middle, lower tissues were merely 3.25 mg RE/g DW, 1.99 mg RE/g DW and 2.52 mg RE/g DW respectively. Every tissue segment of Haloxylon‑host Cistanche was significantly inferior to counterpart Tamarix‑host Cistanche in flavonoid accumulation (P<0.05). Such divergence may be attributed to host‑plant species, soil‑microbiome composition and mineral‑element nutritional circumstance of planting field. Our observation is consistent with former research conclusion: basal root‑adjacent stem part of Cistanche accumulates more flavonoid and polyphenol compounds.

3.3 Variation de la teneur en sucre total

La teneur en sucre total a démontré une divergence remarquable entre les segments du Cistanche hôte du Tamarix (P<0.05). Sugar content progressively increased from upper to lower tissue: upper 56.00 mg DE/g DW; middle 61.11 mg DE/g DW; lower 72.10 mg DE/g DW. In contrast, total‑sugar level of Haloxylon‑host Cistanche maintained narrow range of 14.16‑15.70 mg DE/g DW, without notable tissue‑to‑tissue distinction. Each HC segment had significantly lower total‑sugar concentration than matching TC tissue part (P<0.05). Extreme day‑night temperature difference in Hotan desert climate contributes to carbohydrate accumulation inside Tamarix‑host Cistanche tissues.

3.4 Variation de la teneur totale en triterpénoïdes

Pour les deux variétés, la teneur totale en triterpénoïdes du segment inférieur était statistiquement plus élevée que celle du segment intermédiaire et du segment supérieur (P<0.05). HC lower‑part total‑triterpenoid attained maximum reading 6.75 mg OAE/g DW. TC‑lower triterpenoid concentration (4.59 mg OAE/g DW) was 1.18‑fold versus TC‑middle, 1.13‑fold versus TC‑upper. In general, Haloxylon‑host Cistanche possessed higher total‑triterpenoid pool compared with Tamarix‑host Cistanche (P<0.05).

3.5 Variation de la teneur en proanthocyanidines

La concentration de proanthocyanidine présentait des différences tissulaires significatives pour les deux variétés (P<0.05). Ranking for Haloxylon‑host Cistanche: HC‑lower (0.546 mg PCE/g DW) > HC‑upper (0.423 mg PCE/g DW) > HC‑middle (0.233 mg PCE/g DW). Ranking for Tamarix‑host Cistanche: TC‑lower (0.498 mg PCE/g DW) > TC‑middle (0.447 mg PCE/g DW) > TC‑upper (0.352 mg PCE/g DW). Apart from middle segment, proanthocyanidin contents of HC upper & lower tissues were significantly higher than TC counterpart segments. However, absolute proanthocyanidin magnitude of Cistanche material remained low, matching visual observation: Cistanche stem cross‑section presents whitish color without deep pigmentation characteristic of high‑proanthocyanidin plant organs.

3.6 Variation du verbascoside (marqueur glycoside phényléthanoïde)

Le niveau de verbascoside du Cistanche hôte Tamarix était nettement plus élevé que celui du Cistanche hôte Haloxylon (P<0.05). Within single TC stem, verbascoside concentration gradient: TC‑lower (265.81 mg/g DW) > TC‑middle (168.39 mg/g DW) > TC‑upper (61.76 mg/g DW). For Haloxylon‑host Cistanche: HC‑lower (59.74 mg/g DW) > HC‑upper (55.06 mg/g DW) > HC‑middle (35.89 mg/g DW). Verbascoside predominantly accumulates at basal lower stem segments for both ecotypes.

3.7 Variation de l'échinacoside (marqueur glycoside phényléthanoïde)

Le modèle de distribution de l’échinacoside différait considérablement de celui du verbascoside. Le segment supérieur HC a atteint la valeur maximale d'échinacoside de 92,93 mg/g DW, ce qui représente la lecture la plus élevée parmi tous les échantillons mesurés. La concentration d’échinacoside a progressivement diminué de la partie supérieure vers la partie inférieure pour le Cistanche hôte Haloxylon. À l’inverse, l’hôte Tamarix Cistanche a montré une augmentation du niveau d’échinacoside se déplaçant du tissu supérieur vers le tissu basal inférieur. Plage de teneur en échinacoside des échantillons TC : 40,78 à 57,68 mg/g DW. La teneur en échinacoside du segment supérieur HC a atteint 2,27 fois, 2,11 fois et 1,61 fois par rapport au TC-supérieur, au TC-milieu et au TC-inférieur séparément. Néanmoins, les concentrations d’échinacoside HC-moyen et HC-inférieur étaient significativement inférieures aux valeurs TC-moyenne et TC-inférieure (P<0.05). This divergent spatial‑accumulation feature of two major phenylethanoid glycosides is consistent with many previously‑reported Cistanche investigations. Nutrient translocation flow inside parasitic stem and host‑specific physiological traits are presumed to drive this phenomenon, yet precise molecular regulatory mechanism needs further exploration.

3.8 Résultats de l'activité antioxydante in vitro

Une valeur IC₅₀ plus petite correspond à une performance antioxydante plus forte en matière d’élimination des radicaux libres. Pour le test d'élimination des radicaux DPPH : le Cistanche hôte Tamarix a présenté une activité supérieure à celle du Cistanche hôte Haloxylon. IC₅₀-DPPH de TC : TC inférieure à 5,95 mg/mL ; TC-moyen 6,57 mg/mL ; TC-supérieur 9,94 mg/mL. Pour HC : HC-inférieur à 7,15 mg/mL ; HC-moyen 10,32 mg/mL ; HC-supérieur 12,14 mg/mL. Les segments inférieurs des deux variétés ont fourni une capacité optimale d’élimination des radicaux DPPH.

Le test de piégeage des radicaux cationiques ABTS⁺ a généré une tendance similaire. TC‑IC₅₀‑ABTS⁺ inférieure à=3.28 mg/mL ; TC-moyen 3,53 mg/mL ; TC-supérieur 5,98 mg/mL. HC-inférieur à 5,19 mg/mL ; HC-moyen 5,42 mg/mL ; HC-supérieur 6,81 mg/mL. Les segments inférieurs de la tige possédaient le pouvoir neutralisant ABTS⁺ le plus puissant. Séquence globale de capacité antioxydante : Cistanche hôte Tamarix > Cistanche hôte Haloxylon ; segment inférieur > segment intermédiaire > segment supérieur pour chaque écotype.

3.9 Analyse de corrélation entre la teneur en composés bioactifs et l'antioxydant IC₅₀

La matrice de corrélation de Pearson a montré que la teneur en polyphénols totaux, en flavonoïdes totaux, en proanthocyanidines, en sucres totaux et en verbascoside présentait une corrélation négative avec les paramètres IC₅₀-DPPH et IC₅₀-ABTS⁺. Une corrélation négative signifie qu'une concentration plus élevée de ces biosubstances est liée à une valeur IC₅₀ plus faible (activité antioxydante plus forte). Les flavonoïdes totaux ont montré une corrélation positive extrêmement significative avec le verbascoside (P<0.01); total‑polyphenol correlated positively with total‑sugar (P<0.05). The statistical outcome confirms polyphenols, flavonoids, saccharides and verbascoside jointly contribute to in‑vitro antioxidant performance of Cistanche deserticola raw material.

4. Discussion

Notre expérience comparative a démontré que la variété de la plante hôte et le segment de tissu de la tige déterminent conjointement l'empreinte digitale de la composition chimique de la Cistanche deserticola cultivée au Xinjiang. Le Cistanche parasité par Tamarix accumule une quantité abondante de polyphénols totaux, de flavonoïdes totaux, de sucres totaux et de verbascoside à l'intérieur du tissu basal de la tige inférieure, la concentration diminuant vers les parties médianes et supérieures. Pour l’hôte Haloxylon Cistanche, les tissus de la tige supérieure concentrent un maximum d’échinacoside ; le tissu de la tige inférieure contient la plus grande quantité totale de triterpénoïdes et de proanthocyanidines. Nos résultats sur la distribution tissulaire s'alignent sur plusieurs études publiées sur les composants Cistanche provenant de différentes origines géographiques.

La différence extrême de température diurne dans la zone désertique aride de Hotan facilite la biosynthèse et le stockage des glucides, expliquant en partie la teneur élevée en sucre total mesurée dans les échantillons de Tamarix-hôte Cistanche. Les deux glycosides phényléthanoïdes marqueurs (échinacoside, verbascoside) présentent une tendance opposée à l’accumulation spatiale dans la tige charnue : l’échinacoside enrichit le segment supérieur pour l’écotype hôte Haloxylon, le verbascoside concentre principalement le segment basal inférieur pour les deux écotypes. Ce modèle de distribution spécial peut être lié au transport des nutriments des plantes parasites et à la voie de biosynthèse des métabolites secondaires modulés par les signaux physiologiques de la plante hôte ; le mécanisme de régulation sous-jacent nécessite des recherches supplémentaires en biologie moléculaire.

Du point de vue des applications industrielles, si les produits fonctionnels cibles recherchent une teneur élevée en échinacoside, le matériau du segment supérieur de l'hôte Haloxylon Cistanche doit être sélectionné comme matière première préférée. Si l’objectif de production se concentre sur un complément alimentaire riche en antioxydants et riche en polyphénols flavonoïdes verbascosides, le segment inférieur du Cistanche hôte Tamarix représente une meilleure option. Les écarts mesurables entre les tissus et les composants entre les variétés indiquent qu'il est nécessaire de prendre en compte le type d'hôte et la position des segments de tige lors de l'approvisionnement en matières premières et de la procédure de classement de qualité pour la fabrication de compléments alimentaires liés au Cistanche.

Limites de la recherche actuelle : cette étude a uniquement effectué des tests d'antioxydants chimiques in vitro. La différence d'efficacité pharmacologique des modèles animaux in vivo entre différents segments de tissus de Cistanche nécessite une vérification plus approfondie. En outre, des facteurs environnementaux, notamment l’année de plantation, la période de récolte et l’état nutritionnel du sol, peuvent également modifier le profil des bioconstituants ; l’influence combinée de plusieurs facteurs doit être prise en compte dans les enquêtes de suivi.

5. Conclusion

En résumé, le type de plante hôte et le segment de tissu de la tige imposent des impacts substantiels sur le profil des composants bioactifs et la capacité antioxydante in vitro du Cistanche deserticola cultivé artificiellement et collecté dans le comté de Cele, au Xinjiang.

Le Cistanche hôte Tamarix contient un niveau plus élevé de polyphénols totaux, de flavonoïdes totaux, de sucres totaux et de verbascoside par rapport au Cistanche hôte Haloxylon. Ces substances atteignent leur concentration maximale dans le segment inférieur de la tige et diminuent vers les segments supérieurs.

Le segment supérieur du Cistanche hôte Haloxylon contient la teneur en échinacoside la plus élevée, tandis que son segment inférieur accumule un maximum de substances triterpénoïdes totales.

Les segments inférieurs de la tige des deux variétés offrent une activité antioxydante DPPH et ABTS⁺ plus forte, éliminant les radicaux libres. Les polyphénols totaux, les flavonoïdes totaux, les proanthocyanidines, les sucres totaux et le verbascoside sont positivement associés au pouvoir antioxydant.

Ces résultats expérimentaux fournissent une référence pratique pour la classification des matières premières, la rédaction de spécifications de qualité et le développement d’aliments fonctionnels transformés en profondeur à partir de Cistanche deserticola cultivée au Xinjiang.

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