Une étude sur la fabrication d'une substance naturelle efficace basée sur la fermentation extraite de Schisandra Chinensis
Apr 14, 2023
But:Dans cette étude, un extrait de Schisandra chinensis (SCE) à haute efficacité produit par la fermentation de micro-organismes efficaces (EM) a été utilisé comme matériau antioxydant dans la préparation de produits cosmétiques.
Selon des études pertinentes,cistancheest une herbe commune qui est connue comme "l'herbe miracle qui prolonge la vie". Son composant principal estcistanoside, qui a divers effets tels queantioxydant, anti-inflammatoire,etpromotion de la fonction immunitaire. Le mécanisme entre la cistanche et le blanchiment de la peau réside dans l'effet antioxydant decistancheglycosides. La mélanine de la peau humaine est produite par l'oxydation de la tyrosine catalysée partyrosinase, et la réaction d'oxydation nécessite la participation d'oxygène, de sorte que les radicaux sans oxygène dans le corps deviennent un facteur important affectant la production de mélanine. Cistanche contient du cistanoside, qui est un antioxydant et peut réduire la génération de radicaux libres dans le corps, ainsiinhibant la production de mélanine.

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Introduction
Ces dernières années, l'amélioration et la poursuite d'un niveau de vie élevé ont causé beaucoup de problèmes affectant la santé des gens. Parmi ceux-ci, les produits cosmétiques sont un exemple particulier qui doit être soigneusement étudié. L'utilisation de produits chimiques synthétiques comme ingrédient principal des produits cosmétiques entraîne de nombreux résultats négatifs, tels que la toxicité et le coût élevé. C'est la raison pour laquelle l'étude des produits naturels pour des applications cosmétiques a suscité beaucoup d'intérêt de la part de nombreux chercheurs. Schisandra chinensis (SC) est une plante médicinale et comestible qui a cinq goûts (sucré, acide, amer, salé et piquant)1,2 et est largement utilisée dans de nombreux aliments, boissons et industries à base de plantes, etc.3,4 SC contient de nombreux composés bioactifs, tels que le domaine, l'acide malique et l'acide citrique, et peut être utilisé efficacement pour traiter la toux et l'asthme.5 De plus, il peut être utilisé dans les industries alimentaires et cosmétiques en raison de ses propriétés antibactériennes et capacités antioxydantes. De plus, il a une excellente stabilité à la chaleur et peut être utilisé dans les cosmétiques et les aliments qui n'affectent pas la santé des personnes.6 La fermentation fait référence au processus de décomposition de la matière organique à l'aide des enzymes des micro-organismes et est dérivé du mot latin fervent. 7 Il a été utilisé de diverses manières et dans différents domaines, tels que l'alimentation, les médicaments et les cosmétiques.7 La fermentation des aliments par l'action enzymatique des micro-organismes est traditionnellement utilisée dans les processus de fabrication pour améliorer la saveur et détruire les toxines, et a également pour effet de favoriser les biomolécules.8,9 Les micro-organismes efficaces (EM) sont des micro-organismes utiles qui ont été développés en 1982.10 EM a été développé à l'origine pour être utilisé dans l'agriculture naturelle et biologique. Par la suite, son champ d'application a été progressivement étendu et il est couramment utilisé dans les pays asiatiques, la Russie et les États-Unis.11 Initialement, la solution d'EM a été développée à partir de 80 espèces de 10 genres en 5 familles ; cependant, c'était un processus très complexe. Par conséquent, EM a ensuite été simplement développé par certains organismes principaux, tels que les bactéries photosynthétiques, les bactéries lactiques, les champignons, les levures et les actinomycètes.12 En ce qui concerne l'application de fermentation, il est fermenté dans des conditions anaérobies facultatives, de sorte que ses produits de synthèse, tels que la vitamine et les pigments de carotène en tant qu'antioxydants puissants pour empêcher la décomposition de la matière organique.13 Les acides aminés et les acides organiques résultants sont convertis en protéines et en sucres respectifs, puis absorbés immédiatement par la plante. Cela améliore considérablement l'efficacité de la synthèse et de l'utilisation des aliments végétaux. L'EM a été développé à l'origine pour être utilisé dans l'agriculture naturelle et biologique, mais il est aujourd'hui utilisé dans divers domaines tels que la construction, la médecine et les industries cosmétiques.14–16

Matériels et méthodes
Matériaux
Extraction SC
Préparation de différentes concentrations d'extraits
Analyse des microéléments
Par la méthode du code alimentaire,{{0}}.0 g de l'échantillon a été dissous dans 100 mL d'acide nitrique avec de l'eau DI à 100 degrés. Ensuite, les quantités d'oligo-éléments dans l'échantillon ont été mesurées et analysées avec un analyseur élémentaire (Vario EL, Allemagne).

Mesure de la teneur en polyphénols
La teneur en polyphénols par gramme de l'échantillon a été mesurée par la méthode de Folin-Denis.18 Ainsi, 100 μL d'extrait et 2 % en poids de Na2CO3 ont été mélangés dans un tube EP. Le tube EP a été maintenu à température ambiante pendant 2 min pour la réaction. Après cela, 50% de réactif phénol de Folin-Ciocalteu ont été ajoutés au tube. L'échantillon a été placé dans un mélangeur vortex à température ambiante pendant 30 min puis analysé avec un spectrophotomètre UV-Vis à 750 nm.
Mesure des Flavonoïdes
La teneur totale en flavonoïde par gramme d'extrait a été mesurée par colorimétrie au diéthylène glycol.19 Ainsi, 100 μL d'extrait et 100 μL de NaOH 1,0 N ont été ajoutés à un tube EP et mélangés à l'aide d'un mélangeur de vortex. Après mélange, la solution a été maintenue à 30 degrés pendant 1,0 h pour la réaction. Le rendement de la réaction a été analysé par un spectrophotomètre UV-Vis à 420 nm.
Mesure du piégeage des radicaux libres
Le piégeage des radicaux libres par le 1,1-diphényl-2-picrylhydrazyl (DPPH) a été mesuré par la méthode de Blois modifiée.20 tampon, pH 7,4) et du DPPH 500 mM ont été initialement préparés avec du méthanol. L'hydroxytoluène butylé (BHT) et l'hydroxyanisole butylé (BHA) ont été sélectionnés comme étalons pour l'expérience témoin. Ensuite, 100 μL d'échantillons d'extrait et 400 μL de tampon Tris ont été mélangés dans un tube EP, suivi de l'ajout de 500 μL de solution DPPH. Le mélange a été maintenu dans une chambre noire pendant 20 min, puis analysé par un spectrophotomètre UV-Vis à 517 nm. Dans l'expérience de contrôle, 100 μL de BHT et de BHA ont été ajoutés à la place des échantillons d'extrait. Dans le groupe non additif, 100 μL de tampon Tris ont été ajoutés au tube EP à la place des échantillons d'extrait. La mesure de la capacité de don d'électrons est présentée comme suit :21

Mesure de l'activité de piégeage des nitrites
L'activité de piégeage des nitrites a été mesurée à l'aide de la méthode modifiée développée par Kim et al.22,23 Plus précisément, 00,3 mL de l'échantillon extrait et 00,1 mL de 1.0 Une solution de NaNO2 mM, 0.2 M de tampon citrate-HCl à pH 2,5 a été mélangée pour obtenir un volume final de 1,0 mL. Le mélange a ensuite été mis à réagir à 37 degrés pendant 1,0 h. Ensuite, il a été mélangé avec 0.4 mL de réactif de Griess (solution à 30 % de CH3COOH contenant de l'acide sulfanilique (1,0 % en poids) : naphtylamine (1 % en poids)) et 3 % .0 mL de solution CH3COOH (2,0 % en poids). Ensuite, la réaction s'est déroulée à température ambiante pendant 15 min.
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Mesure de l'activité de type superoxyde dismutase (SODA)

Mesure de l'activité inhibitrice de la tyrosinase
L'activité inhibitrice de la tyrosinase a été mesurée par une version modifiée de la méthode présentée par Masamoto et al. ), {{10}}.{{20}}5 mL de l'échantillon extrait et une solution de tampon phosphate 0,1 M (pH 6,8, volume total 1,5 mL) ont été mélangés à l'aide d'un vortex mélangeur, puis pré-incubé à 25 degrés. Ensuite, 0,05 mL de tyrosinase de champignon à 1380 unités·mL-1 (Sigma Co., USA) a été ajouté puis mélangé à l'aide d'un mélangeur vortex. Après cela, la réaction a été effectuée à 25 degrés pendant 2,0 min.

où A est la valeur d'absorbance entre {{0}}.5 et 1 min de la solution réactionnelle sans l'échantillon, mesurée à 475 nm par un spectrophotomètre UV-Vis ; et B est la valeur d'absorbance entre 0.5 et 1,0 min de la solution réactionnelle avec l'échantillon, mesurée à 475 nm par un spectrophotomètre UV-Vis.
Préparation de la crème
Les formules de crème, à base d'eau distillée, d'huile extraite et d'additifs, ont été préparées comme indiqué dans le tableau 1. L'eau, les additifs et l'huile ont été pesés puis chauffés à 80 degrés dans un bain-marie. De l'eau a été ajoutée lentement et vigoureusement mélangée à de l'huile dans un mini-mélangeur (DS-1800 ; Corée). La crème A a été préparée sans l'huile extraite. Les crèmes B, C, D, E et F contenaient respectivement 1, 5, 10, 20 et 40 mg·mL−1 d'extrait SC (SCE). Les crèmes G, H, I, J et K contenaient 1, 5, 10, 20 et 40 mg·mL-1 de fermentation SCE (SCEF).

Évaluation de la sécurité
Évaluation de la stabilité


Résultats et discussion
Analyse des microéléments
Les résultats de l'analyse par spectrométrie de masse à plasma à couplage inductif (ICP) du SCE sont présentés dans le tableau 2, qui indique que 1,0 mg·mL−1 du SCE contient 23,71, 0,42, et 0.03 mg·kg−1 de K, Fe et Se, respectivement. Lorsque la quantité de SCE augmentait, la teneur en ces oligo-éléments augmentait. À cet égard, l'augmentation de K était dominante et les augmentations de Mn, Fe, Cu et Zn n'étaient pas significatives. La teneur en Se est restée la même quelle que soit la concentration de SCE. Ces oligo-éléments contribuent aux actions de nombreuses substances physiologiquement actives à l'intérieur et à l'extérieur du corps humain et jouent des rôles importants, notamment des activités antioxydantes et immunitaires.
Mesure de l'extrait et de sa teneur en flavonoïdes et polyphénols
Le contenu du SCE était de 27,91 % en poids dans 100 g de SC. L'extraction a fourni le même rendement lorsque la procédure a été réalisée dans de l'eau et de l'éthanol. Cependant, le rendement en extrait était inférieur à celui des articles précédents.26,27 Cela est dû aux différences dans les endroits où le SC a été cultivé, ainsi qu'aux conditions de culture et à la méthode d'extraction.26 La teneur en polyphénols est indiqué dans le tableau 3. L'extrait de SCE ordinaire à 1,0 mg·mL−1 a fourni 1,53±0.02 mg·g−1 de polyphénol, tandis que la même quantité de EM SCEF a fourni une teneur en polyphénols plus élevée (20.84±0.04 mg·g−1) que l'extrait non fermenté. Les résultats d'extraction pour EM SCEF à 5, 10, 20 et 40 mg·mL-1 étaient de 25,82 ± 0,04, 29,13 ± 0,05, 42,07 ± 0,05 et 59,22 ± 0,09 mg·g-1, respectivement.

Mesure du piégeage des radicaux libres
Les radicaux libres dans le corps peuvent favoriser le vieillissement biologique, en réagissant avec les lipides et les protéines. Pour supprimer ce phénomène, de nombreuses études ont porté sur les produits naturels.31 La méthode de test de piégeage des radicaux DPPH est utilisée dans de nombreux produits naturels pour les mesures d'antioxydants en utilisant la capacité de donneur d'électrons des antioxydants.32–34 Les résultats des effets antioxydants dans le SCE et Les groupes EM SCEF sont illustrés à la figure 1. Dans le cas de la capacité de piégeage des radicaux DPPH de SCE, la concentration variant de 1.0, 10 à 40 mg·mL-1, la la capacité antioxydante est passée de 37 pour cent, 72 pour cent, à 74 pour cent. Le groupe EM SCEF a montré une capacité antioxydante de 63 %, 67 % et 79 % aux concentrations respectives de 1,0, 10 et 40 mg·mL-1. Dans le groupe EM SCEF, le changement mineur de la capacité antioxydante avec la concentration semble être dû à la réaction entre l'EM SCEF et les microbes pour produire des substances antioxydantes. La capacité antioxydante du SC a été comparée à certains antioxydants bien connus, tels que le BHT (89 %) et le BHA (88 %). Il a été constaté que la capacité de piégeage des radicaux libres du SC n'était pas très différente de la leur. De plus, le SCEF a une capacité de piégeage des radicaux plus élevée que le SCE, même à de faibles concentrations. Cela signifie que lorsque les solutions actives SC et EM ont réagi l'une avec l'autre, les microbes ont produit des matériaux physiologiquement actifs qui ont la capacité antioxydante. Par conséquent, il est possible de produire un matériau contenant des niveaux plus élevés d'antioxydants avec des quantités inférieures d'EM SCEF que de SCE. Nous avons conclu que cela pourrait résoudre le problème de dosage dans la fabrication de cosmétiques, et simultanément améliorer les aspects fonctionnels des produits cosmétiques contenant des substances naturelles dérivées de plantes.

Mesure de l'activité de piégeage des nitrites
Le nitrite réagit avec l'amine secondaire (un composé chimique dans lequel deux atomes d'hydrogène d'ammoniac sont remplacés par le groupe fonctionnel hydrocarboné R), produisant de la nitrosamine, un cancérigène notoire ; en d'autres termes, le nitrite agit comme un précurseur de la nitrosamine. Par conséquent, la formation de nitrosamine peut être efficacement inhibée en éliminant le nitrate.35 Si la réactivité entre l'échantillon à analyser et le nitrite est élevée, le nitrite sera éliminé car il réagit à l'état ionisé, ce qui entraîne l'inhibition de la formation de nitrosamine. Cela s'applique également à d'autres substances qui existent sous forme d'ions ou d'électrons, et la réactivité élevée de l'échantillon est équivalente ou évaluée comme des activités élevées de piégeage des nitrites et d'antioxydation. Plus la quantité de composés phénoliques totaux dans un échantillon est élevée, plus la réaction de piégeage des nitrites se produit dans la plage de pH inférieure et, de manière négative, l'effet de piégeage diminue dans la plage de pH supérieure.36 Le tableau 5 montre que l'activité de piégeage des nitrites de SCE était de 15 % à 1 mg·mL-1, de 40 % à 10 mg·mL-1 et de 89 % à 40 mg·mL-1. D'autre part, SCEF a montré une activité de piégeage des nitrites de 51 % à 1 mg·mL-1, 69 % à 10 mg·mL-1 et 98 % à 40 mg·mL-1. A partir de ce test, il a été observé qu'à mesure que la concentration des deux groupes augmentait, l'activité de piégeage augmentait également. De plus, le SCEF était supérieur au SC dans son activité de piégeage des nitrites, ce qui est similaire à d'autres résultats expérimentaux. À une concentration de 1,0 mg·mL−1, la différence d'activité de piégeage était de 40 mg·mL−1, la plus grande parmi les différentes concentrations, et l'écart se rétrécissait à mesure que la concentration augmentait. À partir de cette expérience comparative, grâce au processus de fermentation EM, l'effet de piégeage des nitrites du SC, qui a été évalué comme étant assez bon, s'est encore amélioré. Ce phénomène peut être attribué au processus de fermentation générant plus de substances biologiquement actives, ce qui, à son tour, a entraîné une augmentation de l'inhibition de la formation de nitrosamines, ainsi que de nombreux phénols, en tant qu'ingrédients végétaux bruts, contribuant également à la réaction efficace de piégeage des nitrites. .


Mesure de SOUDE
La SOD est un antioxydant enzymatique qui peut détoxifier et supprimer la toxicité de l'O2, du H2O2, du peroxyde, des radicaux OH, etc. 0, et 40 mg·mL-1. Le groupe SCE avait 6 %, 18 % et 41 % de SODA, tandis que le groupe EM SCEF avait 28 %, 32 % et 43 % de SODA lorsque la concentration passait de 1 à 40 mg·mL-1. Pour analyser la différence d'activité des deux groupes, la différence de valeur de SODA était plus élevée à une faible concentration de SCE et de SCEF (1,0 mg·mL-1) et plus petite à une concentration élevée (40 mg·mL-1). Dans ce test, les deux groupes avaient un niveau exceptionnel de SODA.26,39 Par conséquent, on peut estimer que SCE et SCEF ont des capacités antioxydantes élevées, d'origine naturelle.
Mesure de l'activité inhibitrice de la tyrosinase
Le mécanisme de l'activité inhibitrice de la tyrosinase est très important dans l'industrie cosmétique et peut être utilisé comme mesure de l'effet de blanchiment de la peau.40 Dans le groupe SCE, l'activité inhibitrice de la tyrosinase est passée de 35 % à 36 %, 37 %, 38 % et 39 pour cent à mesure que la concentration de l'extrait augmentait (tableau 7). Dans le groupe EM SCEF, l'activité inhibitrice de la tyrosinase est passée de 38 % à 39 %, 40 %, 41 % et 42 % lorsque la concentration augmentait. L'EM SCEF avait une activité inhibitrice de la tyrosinase plus efficace que l'extrait normal, mais il n'y avait pas beaucoup de différence. Cependant, on pense que les deux extraits ont un effet blanchissant sur la peau lorsqu'ils sont utilisés pour fabriquer des cosmétiques.41


Évaluation de la sécurité
Les formules de cosmétiques avec différentes concentrations de SCE et EM SCEF, c'est-à-dire {{0}}.0, 1.0, 5.0, 1{{ 25}}, 20 et 40 mg·mL−1, sont présentés à la figure 2. Les cosmétiques fabriqués ont été formés sous forme posologique E/H en ajoutant la phase aqueuse à la phase huileuse . La valeur du pH de la surface de la peau humaine se situe généralement entre 4,5 et 6,5, ce qui est soit légèrement acide, soit neutre.42 Si le pH devient alcalin, la résistance de la peau sera affaiblie, entraînant la propagation de germes et éventuellement des maladies de la peau. Par conséquent, il est fortement recommandé d'utiliser des produits cosmétiques neutres ou légèrement acides. L'évolution de la valeur du pH avec le temps de stockage est représentée sur la figure 3. En utilisant la crème sans SCE, le pH a été légèrement augmenté à 6,23 après 60 jours par rapport à sa valeur initiale de 6,25. Les produits à base de crème avec des concentrations de SCE de 1,0, 5,0, 10, 20 et 40 mg·mL-1 avaient des valeurs de pH initiales de 5,53, 3,87, 3,43, 3,15 et 3,03, respectivement. Ces valeurs de pH n'ont pas changé après 60 jours. Les crèmes à base d'EM SCEF avec des concentrations d'EM SCEF de 1,0, 5,0, 10, 20 et 40 mg·mL−1 avaient des valeurs de pH initiales de 4,12, 3,46, 3,37, 3,15 et 2,98, respectivement. Des valeurs de pH similaires ont été observées après 60 jours. Ces résultats signifient qu'il n'y avait pas de différence significative dans le changement de pH dans les deux groupes et lorsque la concentration de l'extrait augmentait, la valeur du pH diminuait. Ces résultats impliquent qu'il n'y avait pas de problèmes de sécurité dans l'utilisation de ces produits cosmétiques.
Effet de la température sur la stabilité cosmétique


Conclusion

Reconnaissance
Divulgation
Les références
1. Choi BR, Kim HK, Park JK. Effets de l'extrait de fruit de Schisandra chinensis et du domaine A sur la contractilité du muscle lisse du corps caverneux du pénis : un mécanisme potentiel via la voie de l'oxyde nitrique - guanosine monophosphate cyclique. Nutr Res Pract. 2018;12 (4):291–297. doi:10.4162/nrp.2018.12.4.291
2. He JL, Zhou ZW, Yin JJ, He CQ, Zhou SF, Yu Y. Schisandra chinensis régule les enzymes métabolisant les médicaments et les transporteurs de médicaments via l'activation de la voie de signalisation médiée par Nrf2-. Drug Des Devel Ther. 2015;9:127–146.
3. Nowak A, Szyda MZ, Błasiak J, Nowak A, Zhang Z, Zhang B. Potentiel de Schisandra chinensis (Turcz.) Baill. En santé et nutrition humaines : état des lieux des connaissances actuelles et perspectives thérapeutiques. Nutriments. 2019;11(2):333. doi : 10.3390/nu1102 0333
4. Ramanathan L, Das NP. Études sur le contrôle de l'oxydation des lipides chez les poissons de fond par certains produits naturels polyphénoliques. J Agric Food Chem. 1992;40(1):17–21. doi:10.1021/jf00013a004
5. Yang S, Yuan C. Schisandra chinensis : un examen complet de ses activités phytochimiques et biologiques. Arab J Chem. 2021;14 (9):103310. doi:10.1016/j.arabjc.2021.103310
6. Cho EG, Cho HI, Choi YJ. Activités antioxydantes et antibactériennes et effet inhibiteur de la tyrosinase et de l'élastase de la boisson fermentée Omija (Schizandra chinensis Baillon.). J Appl Biol Chem. 2010;53(4):212–221. doi:10.3839/jabc.2010.038
7. Park SJ, Seong DH, Park DS, et al. Compositions chimiques de Codonopsis lanceolata fermenté. J Coréen Soc Food Sci Nutr. 2009;38(3):396–400. doi:10.3746/jkfn.2009.38.3.396
8. Dimidi E, Cox SR, Rossi M, Whelan K. Aliments fermentés : définitions et caractéristiques, impact sur le microbiote intestinal et effets sur la santé et les maladies gastro-intestinales. Nutriments. 2019;11(8):1806. doi:10.3390/nu11081806
9. Lune SH, Chang HC. Fermentation du son de riz utilisant Lactiplantibacillus plantarum EM comme starter et potentiel du son de riz fermenté comme aliment fonctionnel. Nourriture. 2021;10(5):978. doi:10.3390/aliments10050978
10. Katina K, Liukkonen KH, Kaukovirta A, Adlercreutz H, Heinonen SM, Lampi AM. Modifications induites par la fermentation de la valeur nutritionnelle du seigle germé. J céréales Sci. 2007;46 (3):348–355. doi:10.1016/j.jcs.2007.07.006
11. Foolad N, Brezinski EA, Chase EP, Armstrong AW. Effet de la supplémentation en nutriments sur la dermatite atopique chez les enfants. Arche Dermatol. 2012;17:E1–E6.
12. Olle M, Williams IH. Micro-organismes efficaces et leur influence sur la production végétale - une revue. J Hortic Sci Biotechnol. 2031;88 (4):380–386. doi:10.1080/14620316.2013.11512979
13. Uma MN, Abirami R. Un examen des micro-organismes efficaces et de leurs applications. AJMR. 2019;8(4):121–129. doi :10.5958/2278-4853.20 19.00142.3
14. Bzdyk RM, Olchowik J, Studnicki M, et al. L'impact des Microorganismes Efficaces (EM) et des engrais organiques et minéraux sur la croissance et la colonisation mycorhizienne des semis de Fagus sylvatica et Quercus robur dans une expérience de pépinière à racines nues. Les forêts. 2018;9(10):597. doi:10.3390/f9100597
15. Chui CH, Cheng GYM. Potentiel inhibiteur de croissance d'un extrait de fermentation efficace de micro-organismes (EM-X) sur les cellules cancéreuses. Int J Mol Med. 2004;14:925–929.
16. Chui CH, Hau DKP. Potentiel apoptotique de l'extrait concentré efficace de fermentation de micro-organismes sur des cellules cancéreuses humaines. Int J Mol Med. 2006;17:279–284.
17. Appuyez sur le mien. Effectuer des tests en laboratoire selon les spécifications et les méthodes de test du code alimentaire. Alimentation & Administration ; 2003 :887–892.
18. Latimer GW. Méthodes officielles d'analyse de l'AOAC International. 21e éd. Relié; 2019
19. Kim JH. Etudes sur l'activité biologique des extraits membranaires d'astragale. Biomed Sci Lett. 2012;18(1):35–41.
20. MS de Blois. Dosage antioxydant par l'utilisation d'un radical libre stable. Nature. 1958;26(4617):1199–1200. doi:10.1038/1811199a0
21. Ahn YH, Yoo JS, Kim SH. Un test de capacité antioxydante utilisant une pastille de DPPH à base d'alcool polyvinylique. Bull Korean Chem Soc. 2010;31(9):2557–2560. doi:10.5012/bkcs.2010.31.9.2557
22. Kim BJ, Park YK, Kang BS. L'effet de Rubifructus sur l'ovulation et les ovaires chez les rats. Coréen J Herb. 2001;16:139–152.
23. Gray JI, Dugan JRL. Inhibition de la formation de N-nitrosamine dans le système alimentaire modèle. J Food Sci. 1975;40(5):981–985. doi :10.1111/j.1365- 2621.1975.tb02248.x
24. Marklund S, Marklund G. Implication du superoxyde, un radical aminé dans l'oxydation du pyrogallol et un dosage pratique de la superoxyde dismutase. Eur J Biochem. 1975;47:468–474.
25. Masamoto YH, Ando Y, Murata Y, Shiraishi M, Tada K, Takahata K. Activité inhibitrice de la tyrosinase des champignons de l'esculétine isolée des graines d'Euphorbia lathyris L. Biosci Biotechnol Biochem. 2003;67(3):631–634. doi:10.1271/bbb.67.631
26. Kwon HJ, Park CS. Activités biologiques des extraits d'Omija. Coréen J Food Preserv. 2008;15:587–592.
27. Shin HO. Études sur l'effet physiologique du polyphénol purifié et le développement de l'émulsification multiple. Gyeongbuk, Corée : École supérieure du Département des sciences cosméceutiques, Université de Daegu Haany ; 2009.
28. Markris DP, Rossiter JT. Comparaison de la quercétine et d'un flavonol hydroxy non ortho en tant qu'antioxydants par des réactions d'oxydation in vitro concurrentes. J Agric Food Chem. 2001;49(7):3370–3377. doi:10.1021/jf010107l
29. An BJ, Park TS, Lee JY, et al. L'effet antimicrobien de l'ajout de polyphénols de thé vert irradié dans la composition cosmétique. J Coréen Soc Appl Biol Chem. 2007;50:210–216.
30. Hong JY, Nam HS, Yoon KY, Shin SR. Activités antioxydantes des extraits de jujube noir fermenté. Coréen J Food Preserv. 2012;19(6):901–908. doi:10.11002/kjfp.2012.19.6.901
31. Youn JS, Shin SY, Wu Y, et al. Effets antioxydants et anti-rides d'Aruncus dioicus var. extrait de kamtschaticus. Coréen J Food Preserv. 2012;19(3):393–399. doi:10.11002/kjfp.2012.19.3.393
32. Chan YY, Kim KH, Cheah SH. Effets inhibiteurs de la polycystine de sargasses sur l'activité de la tyrosinase et la formation de mélanine dans les cellules de mélanome murin B16F10. J Ethnopharmacol. 2011;137(3):1183–1188. doi:10.1016/j.jep.2011.07.050
33. Huang HC, Hsieh WT, Niu YL, Chang TM. Inhibition de la mélanogénèse et propriétés antioxydantes de l'extrait de fleur de Magnolia grandiflora L.. Complément BMC Altern Med. 2012;6:12–72.
34. Jang MJM, Woo H, Kim YH, Jun DY, Rhee WJ. Effets de l'activité antioxydante, anti-radicalaire DPPH et anti-thrombogène par l'extrait de Sancho (Zanthoxylum schinifolium). Coréen J Nutr 2005;38:386–394.
35. Fiddler W, Piotrowski EG, Pensabean JW, Doerr RC, Wassermann AE. Effet de la concentration de nitrite de sodium sur la formation de N-nitroso diméthylamine dans les saucisses de Francfort. J Food Sci. 1972;37(5):668–673. doi :10.1111/j.1365-2621.1972.tb02721.x
36. Lee SJ, Chung MJ, Shin JH, Sung NJ. Effet des composants végétaux naturels sur le piégeage des nitrites. J Sécurité Hygiène Alimentaire. 2000;15 (2):88–94.
37. Kang BR, Modifications des activités de type SOD et des capacités de piégeage des nitrites par la germination dans le riz brun, thèse de maîtrise de l'Université nationale de technologie de Séoul (2003).
38. Yang YW, Hsu PYJ. L'effet des microparticules de poly (D, L-Lactide-Co-Glycolide) avec des surfaces multicouches auto-assemblées de polyélectrolyte sur la présentation croisée d'antigènes exogènes. Biomatériaux. 2008;29(16):2516. doi:10.1016/j.biomaterials.2008.02.015
39. Serrano MC, Pagani R, Manzano M, Comas JV, Portoles MT. Potentiel de la membrane mitochondriale et teneur en espèces réactives de l'oxygène des cellules musculaires endothéliales et lisses cultivées sur des films de poly-(epsilon-caprolactone). Biomatériaux. 2006;27(27):4706. doi:10.1016/j.biomaterials.2006.05.007
40. Pawelek JM. Après le dopachrome. Pigm Cell Res. 1991;4(2):53–62. doi :10.1111/j.1600-0749.1991.tb00315.x
41. Invergar R, McEvily AJ. Etudes sur l'activité biologique de l'extrait de Crataegi Fructus. Coréen J Herbol. 1992;17(1):29–38.
42. Wilkinson JB, Moore RJ. Cosmétologie de Harry. New York : Chemical Publishing Co., Inc. ; 1982 : 749.
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