Analyse de la composition nutritionnelle de la Cistanche Deserticola et de son activité antioxydante

Abstrait:Cistanche désertiqued'origine Alashan en Mongolie intérieure ont été sélectionnés et analysés pour leur composition nutritionnelle etactivité antioxydante. Les résultats ont montré que la teneur en protéines de Cistanche deserticola était de 13,08 g/100 g, la teneur en matières grasses était de 0,20 g/100 g, la tteneur totale en polyphénolsétait (19h90±3,74) mg GAE/g DW, et la teneur totale en flavonoïdes était de (10,67±2,56) mg ER/g DW. Extraits aqueux et éthanoliques deCistanche désertiqueont pu éliminer les radicaux libres DPPH et ABTS, montrant une relation dose-effet dans la plage de concentrations, et l'extrait éthanolique deCistanche désertique avait une meilleure activité de piégeage des radicaux libres. Cette expérience peut fournir un support théorique au développement de produits antioxydants deCistanche désertique. 

Mots clés:Cistanche désertique; composition nutritionnelle;polyphénols totaux;flavonoïdes totaux

COMBIEN DE TEMPS FAUT-IL POUR CISTANCHE TRAVAILLER T ?

Cistanche désertiqueest une plante aux riches valeurs médicinales, également connue sous le nom de bourgeon doré, de gnome et de brassica. La Cistanche deserticola est connue sous le nom de « ginseng du désert » en raison de sa haute valeur nutritionnelle [1] et possède des propriétés à double usage comme aliment et médicament. À l'heure actuelle, plus de 120 composés ont été isolés de Cistanche deserticola, parmi lesquels des glycosides phényléthanoïdes [2-3], des lignanes et leurs glycosides [4], des polyphénols et polysaccharides, etc. [5-6]. Ils sont utilisés dans les antioxydants [7], ils jouent un rôle positif dans les aspects anti-inflammatoires [8] et dans d’autres aspects. En tant que consommateurla prise de conscience des soins de santé augmente, la Cistanche deserticola et ses extraits sont de plus en plus utilisés dans l'alimentation.

Alxa, en Mongolie intérieure, est l'une des principales zones de production de Cistanche deserticola [9]. La superficie actuelle de plantation de Cistanche deserticola a dépassé 260 km2. Cependant, il existe actuellement peu de rapports sur la composition nutritionnelle et l'activité antioxydante de Cistanche deserticola à Alxa.

Cette étude utilise Cistanche deserticola d'Alxa en Mongolie intérieure comme produit expérimental pour analyser ses composants nutritionnels et mesurer l'activité antioxydante de l'extrait de Cistanche deserticola afin de comprendre les composants nutritionnels et l'activité antioxydante de Cistanche deserticola d'Alxa et fournir une théorie pour le développement de Cistanche deserticola. des produits. soutien.

1 Matériels et méthodes

1.1 Matériels et réactifs

Cistanche deserticola a été collectée à Alxa, en Mongolie intérieure ; Folin phénol, éthanol, phénol, acide gallique et rutine (Shanghai McLean) ; hydroxyde de sodium, nitrite de sodium, nitrate d'aluminium et carbonate de sodium (Shanghai Aladdin) ; DPPH, ABTS (États-Unis) Sigma).

1.2 Instruments et équipements

Évaporateur rotatif (Guangzhou Aika) ; centrifugeuse à grande vitesse (Eppendorf, États-Unis) ; machine de nettoyage à ultrasons (Beijing Taiyuanda); four de séchage électrique (Shanghai Zhixin) ; concasseur (Hebei Benchen); lecteur de microplaques (BioTek (USA).

1.3 Méthodes expérimentales

1.3.1 Préparation de l'extrait de Cistanche deserticola

Lavez la Cistanche deserticola fraîche, éliminez les impuretés, coupez-la en tranches épaisses et appliquez la méthode de Zhang Wenye et al. [11] avec de légères modifications. Préparez une solution de rutine de 5 0 mg·mL-1 et une solution de rutine de 0 à 0,13 mg·mL-1.

Solution de courbe d'étalonnage D. Mélangez 1 ml de solution échantillon avec 0,3 ml de solution de nitrite de sodium à 5 % et laissez reposer 15 minutes. Ajouter 0,3 mL de solution de nitrate d’aluminium à 10 % et 4 mL de solution d’hydroxyde de sodium à 4 % pour ajuster le volume à 10 mL. Laisser reposer dans l'obscurité pendant 20 minutes et mesurer l'absorbance A510. La teneur totale en flavonoïdes a été exprimée en équivalents de rutine (mg RE/g DW).

1.3.2 Détermination des composants nutritionnels de base de Cistanche deserticola

La méthode de séchage direct a été utilisée pour déterminer la teneur en humidité ; la méthode Kjeldahl a été utilisée pour déterminer la teneur en protéines ; la méthode d'extraction Soxhlet a été utilisée pour déterminer la teneur en matières grasses ; et la méthode de combustion au four à moufle a été utilisée pour déterminer la teneur en cendres.

1.3.3 Détermination de la teneur phénolique totale ug·mL-1 de la solution d'acide gallique et préparer une solution de courbe d'étalonnage de 0 à 100 ug·mL-1. Prélever 100 μL d'échantillon, ajouter 100 μL de réactif folinol à 10 %, laisser reposer 15 min, ajouter 80 μL de solution de carbonate de sodium à 7,5 %, laisser reposer dans l'obscurité pendant 60 min et mesurer l'absorbance A760. La teneur totale en polyphénols a été exprimée en équivalents d'acide gallique (mg GAE/g DW).

1.3.4 Détermination de la teneur totale en flavonoïdes

Se référer à la méthode de Zhang Wenye et al. [11] avec de légères modifications. Préparer

Se référer à la méthode de LI et al. [10] avec de légères modifications. Préparez 250ea 50 mg·mL-1 solution de rutine et une solution de courbe d'étalonnage de rutine de 0 à 0,13 mg·mL-1. Mélangez 1 ml de solution échantillon avec 0,3 ml de solution de nitrite de sodium à 5 % et laissez reposer 15 minutes. Ajouter 0,3 mL de solution de nitrate d’aluminium à 10 % et 4 mL de solution d’hydroxyde de sodium à 4 % pour ajuster le volume à 10 mL. Laisser reposer dans l'obscurité pendant 20 minutes et mesurer l'absorbance A510. La teneur totale en flavonoïdes a été exprimée en équivalents de rutine (mg RE/g DW).

1.3.5 Détermination de la capacité de piégeage des radicaux libres DPPH de l'extrait de Cistanche deserticola

Se référer à la méthode de PEREIRA FARIAS et al. [12] avec de légères modifications. Prélevez une quantité appropriée d'échantillon, diluez-la avec un solvant, mélangez 100 μL de solution échantillon et 900 μL de solution DPPH et laissez reposer dans l'obscurité pendant 25 minutes. Mesurez l'absorbance A518 et calculez le taux de piégeage des radicaux DPPH comme

1.3.5 Détermination de la capacité de piégeage des radicaux libres DPPH de l'extrait de Cistanche deserticola

Se référer à la méthode de PEREIRA FARIAS et al. [12] avec de légères modifications. Prélevez une quantité appropriée d'échantillon, diluez-la avec un solvant, mélangez 100 μL de solution échantillon et 900 μL de solution DPPH et laissez reposer dans l'obscurité pendant 25 minutes. Mesurez l'absorbance A518 et calculez le taux de piégeage des radicaux DPPH comme

Dans la formule : A1 est l'absorbance après la réaction entre l'échantillon et le DPPH ; A0 est l'absorbance après la réaction entre l'eau distillée et le DPPH ; A2 est l'absorbance après la réaction entre l'échantillon et l'éthanol absolu.

1.3.6 Détermination de la capacité d'élimination des radicaux libres ABTS de l'extrait de Cistanche deserticola

Se référer à la méthode de Kong Yuting et al. [13] pour préparer la solution réactionnelle. L'absorbance de 20 μL d'échantillon mélangés à 200 μL de solution ABTS a été lue à 734 nm. La formule de calcul du taux d’élimination des radicaux libres ABTS est

taux d'élimination des radicaux libres

Taux de piégeage des radicaux libres (2)

Dans la formule : A3 est l'absorbance après la réaction entre l'échantillon et l'ABTS ; A4 est l'absorbance après la réaction entre l'échantillon et l'éthanol à 70 % ; A5 est l'absorbance après la réaction entre l'eau distillée et l'ABTS.

1.3.7 Statistiques et analyse des données

Pas moins de 3 mesures parallèles ont été effectuées et les résultats ont été exprimés en « moyenne ± écart type ». Toutes les données ont été analysées à l'aide d'IBM SPSS 27.0 et GraphPad 8. P<0.05 means the difference is statistically significant.

2 Résultats et analyse

2.1 Analyse des composants nutritionnels de Cistanche deserticola

Les résultats des mesures de la teneur en humidité, en matières grasses brutes, en cendres et en protéines de Cistanche deserticola sont présentés dans le tableau 1. La teneur en protéines brutes de Cistanche deserticola est de 13,08 g/100 g, et la teneur en matières grasses brutes est de 0,20 g/100 g, ce qui indique que la Cistanche deserticola est un aliment sain, riche en protéines et faible en gras.

2.2 Analyse des composants actifs de Cistanche deserticola

Les polyphénols totaux et les flavonoïdes totaux de Cistanche deserticola ont été mesurés par colorimétrie. Les résultats ont montré que la teneur totale en polyphénols de Cistanche deserticola était de (19,90 ± 3,74) mg de GAE/g de DW et que la teneur totale en flavonoïdes était de (10,67 ± 2,56) mg de RE/g. DW. La Cistanche deserticola est riche en principes actifs pouvant avoir un impact positif sur la santé humaine.

2.3 Analyse de la capacité antioxydante de l'extrait de Cistanche deserticola

Comme le montre la figure 1 (a), l'activité de piégeage du DPPH de l'extrait de Cistanche deserticola augmente avec l'augmentation de la concentration. La valeur IC50 du taux d'élimination des radicaux libres DPPH de l'extrait éthanolique était de 1,205 mg·mL-1 et la CI50 de l'extrait aqueux était de 2,813 mg·mL-1, ce qui indique que l'extrait éthanolique de Cistanche deserticola a une meilleure activité de piégeage des radicaux libres DPPH. Comme le montre la figure 1 (b), l'extrait de Cistanche deserticola est transparent et sans ABTS.

L'activité d'élimination augmente avec l'augmentation de la concentration. La valeur IC50 du taux d'élimination des radicaux libres ABTS de l'extrait éthanolique était de 1,849 mg·mL-1, tandis que la CI50 de l'extrait aqueux était de 2,748 mg·mL-1, indiquant que l'extrait éthanolique de Cistanche deserticola peut mieux éliminer les radicaux libres ABTS.