CISTANCHE TUBLULOSA POURRAIT ÊTRE CONSIDÉRÉE COMME PLANTE MÉDICINALE DANS LA CULTURE DES HALOPHYTES Ⅱ

Aug 30, 2022

2. MEDICINALVALUE DECISTANCHE DANSICOURU
2.1. Matériaux et méthodes
2.1.1. Collecte de matériel végétal

C. tubulosaa été collecté à Yazd dans le plateau central de l'Iran. Les solsde cette région ont une texture modérée à lourde et des sources d'eau souterraine salinessont très salés. Les encadreurs cultivent Tamarix comme brise-vent autour de PistachioVerger. L'hôte de laC. tubulosadans ce site était Alhaji, Tamarix etSeidlitzia.

La zone étudiée est de 53 degrés 10' de longitude et 32 ​​degrés 28' de latitude etl'altitude du niveau de la mer est de 1036 mètres avec une pluviométrie de 61 mm et 2789mm d'évapotranspiration. La température moyenne du mois le plus chaud de l'annéeest de 32 degrés et le mois le plus froid de l'année est de 6 degrés. Géologiquement, la région estdu Précambrien au Quaternaire. Le désert Chah Afzal dans lepassé était un lac qui s'est asséché en raison d'une forte évaporation et est devenudésert. Dans cette région Tamarix et Haloxylon cultivés sur 3000 hectares parsoutien du gouvernement à l'écologisation. DouzeCistanche tubulosasans pour autantinflorescence retirée du sol. La tige charnue a été lavée au robinetl'eau et nettoyé. Puis coupé en petits morceaux et séché dans un four à 50 degréstempérature pendant 7 jours.


2.1.2. Analyse de composition approximative
Le pourcentage de matière sèche et la teneur en humidité de l'échantillon ont étédéterminé en pesant un certain poids de l'échantillon et en le plaçant dans lefour jusqu'à ce qu'un poids constant soit atteint. Pour déterminer la teneur en cendres, 2 gde l'échantillon pesé a été chauffé à 550 degrés pendant 5 heures dans un four électrique pouratteindre une cendre grise et blanche sans carbone. La teneur en huile dans 2 g d'échantillon étaitdéterminée à l'aide d'un extracteur Soxhlet et d'un solvant d'éther de pétrole à latempérature d'ébullition et 4 heures de temps d'extraction des graisses. La teneur totale en protéinesde 2 g d'échantillon a été mesuré en utilisant la digestion, la distillation, la collecte ettitrage de Kjeldahl et en utilisant un coefficient de 6,25 pour convertir le pourcentage deazote en protéines. La détermination de la teneur en fibres brutes de l'échantillon a étéréalisée à l'aide de la méthode de digestion acide alcaline. Tous les tests ont été effectués en deuxréplications. Le pourcentage de glucides totaux a été obtenu selonl'équation suivante après les mesures ci-dessus.

Pourcentage total de glucides=100- (pourcentage de cendres plus protéinespourcentage plus teneur en humidité plus pourcentage de matières grasses).

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2.1.3. Analyse minérale
Les éléments de l'échantillon ont été analysés à l'aide d'un plasma à couplage inductifspectroscopie (ICP) intégrée à la spectrométrie de masse (ICP-MS). En premier,0.25 g de chaque échantillon de plante ont été placés dans un four à micro-ondes et 3 ml dede l'acide nitrique de qualité analytique et 1 ml de peroxyde d'hydrogène ont été ajoutés àl'échantillon. Après les premières réactions, le capuchon de la cellule à micro-ondes a été placé etl'échantillon a été dissous selon le programme thermique. Sur lel'achèvement de la dissolution et du refroidissement de la cellule, la solution obtenueatteint 25 ml en utilisant de l'eau sans ions. Utilisation de la série HP Agilent 4500Appareil ICP/MS et solutions standard, l'échantillon a été compté pour leur
éléments de blocs de construction. Les concentrations de solvant standard vont de 0.1ppb à 100 ppm. Tous les tests ont été effectués en deux répétitions. L'analyseconditions ont été fixées comme suit :Puissance : 1000 watts, débit de plasma : 15 (l/min), Aux : 0,8 (l/min), nébuliseur :

0.75 (l/min), Type de nébuliseur : Flux croisés, Chambre de nébulisation : Scott, Intégrationtemps : 0,1 seconde.


2.1.4. Détermination des glycosides phényléthanoïdes
2.1.4.1. Extraction d'échantillon

La plante réduite en poudre (33 g) a été mélangée avec 70 % d'éthanol (50 cm3). Lale mélange a été soumis à une extraction à 30 degrés pendant 5 heures sous agitateurles conditions. L'extrait a été filtré avec du papier filtre Whatman n° 42 pourséparer la biomasse. Le jus d'extraction est passé à travers un filtre 0.45 µmmembrane.


2.1.4.2. LC - Analyse de masse
Les composés bioactifs dans l'extraction des plantes ont été déterminés par LC- Masstechnique. Les conditions d'analyse ont été fixées comme suit :
État CL :
o CLHP Agilent modèle 1200
o Colonne : Eclipse XDB – C18 (15 cm, 3,5 µm)
o Température de la colonne : 25 degrés
o Phase mobile : A {{0}} Eau plus 0,1 % d'acide acétique
o B {{0}} Acétonitrile plus 0,1 % d'acide acétique
o Débit : 0.3 ml/min

o Volumes d'injection : 10 µL


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2.1.4.3. Activité antioxydante

Les extraits de plantes ont été séchés au four, puis des solutions d'échantillon (50,100, 200, 400, 800 ppm) ont été préparés. Le test de piégeage des radicaux DPPH a étédéterminée à l'aide du radical DPPH (2, 2-diphényl 1-picryl hydrazyl).


2.1.4.4. Résultats
Quantité de matières grasses deC. tubulosaest faible mais la teneur en protéines était9,8 % et la teneur en cendres est de 6,3 %. Fahmy (2013) a signalé 11,92 pour cent de cendres dans le tuberculetige deC. phelypaea. C. tubulosaavait une teneur en glucides de 72,64 %(Tableau 2).

Évaluation de 48 éléments dansC. tubulosaont montré que Na, K, Mg, S, Ca,P et Fe sont les éléments dominants de la tige. Zheng et Du (2011) ont évaluéteneur en minéraux deC. deserticolaà différents stades de croissance et lesproportion de K : Na : P : Ca : Mg était de 12 : 3,4 : 1,6 : 1,4 : 1 au niveau de la tige succulentestade et la teneur en Fe était la plus élevée et peut atteindre 97,31 µg g-1.

Montantde Fe dansC. philypéesignalé 8,04 ppm (Elwakil et al., 2016) mais dansC. tubuleuxétait de 142 ppm à ce stade (tableau 3). Le rapport K/Na était 0.49 mais dansC. phélypéesétait de 8. Le rapport de teneur en K à Mg, S, Ca, P et Fe dansC. tubulosaétaient7,7, 10.0, 15,65, 36,15 et 186,35 (tableau 3)

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Dans la tige succulente sèche deC. tubulosapar analyse HPLC/MS sixglycosides phényléthanoïdes (Actéoside, Cistanoside A, isoacétoside,

Échinacoside, 2-Acétylactéoside, Tubuloside B) identifié. DansCistanchesalsale composant principal était l'échinacoside (1097,9 mg 100 g-1)(Kartbaeva, Sakipova, Ibragimova, Kapsalyamova et Ternynko, 2015).

DansC. deserticola, C. salsaet C.sinusoïdalglycosides phényléthanoïdes (PhG)rapporté dans lequel l'échinocoside et l'actéoside sont les principaux composants.

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Les PhG pourraient améliorer la fonction sexuelle et la mémoire des souris (Gao, Wang, &Wu, 2005) et pourrait traiter et protéger les maladies de Parkinson (Chen et al.,2007). Les PhG pourraient retarder le vieillissement (Liu, Yang, Dong, Zhang et Ma, 2018).

L'échinacoside prévient la mort cellulaire programmée dans le système nerveux en développementet avait des effets protecteurs et thérapeutiques sur la peau radio-induitedommages (Li, Zheng, Liu et Jia, 1992; Sui et al., 2011). L'échinacoside pourraitprotéger les cellules neuronales du piégeage des radicaux et avoir un effet anti-tumoral(Liu, Li et Du, 2008)


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Le tableau 4 montre l'activité dépendante de la dose de DPPH dansC. tubulosaDPPH utilisé pour tester la capacité de piégeage des radicaux des extraits (Pavithra& Vadivukkarasi, 2015). Les extraits ont montré des niveaux élevés de radicaux DPPHactivité de piégeage sur la plage de concentration de 50 à 800 ppm.


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Tableau 5. Essai de piégeage des radicaux libres DPPH

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3. DDISCUSSION

Dans cette section, chaque type de quantité de composition alimentaire dans Cistanche estpar rapport à d'autres produits alimentaires et à certains légumes courants. Aussi, dans l'ordrepour évaluer plus précisément la valeur nutritionnelle de cet échantillon, l'importanceet la quantité de chaque type de composition alimentaire sont brièvement introduits.

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3.1. Contenu de la composition approximative

3.1.1. Protéine brute
Basé sur la recommandation de l'Institute of Medicine (Medicine, 2005)les adultes devraient consommer au moins 0,8 grammes de protéines pour chaque kilogrammede leur poids corporel par jour. En général, la quantité de protéinesrecommandations sont liées aux besoins fondamentaux des individus. Dans le donnéTableau ci-dessous, l'exigence de base est présentée uniquement sur la base dedifférents groupes d'âge et de sexe, qui varient selon les recommandationsactions des nutritionnistes pour différentes conditions telles que l'activité physique,la température régionale et les maladies.

Comme le montre le tableau 2, la teneur en protéines de cet halophyte se situe dans la plagede 9,8 pour cent du poids sec de la plante, ce qui est relativement bon par rapportaux sources de protéines présentées dans le tableau des additifs alimentaires (USDA, 2016).

Cette quantité s'est avérée élevée dans les ressources en viande animale avec desqualité et valeur biologique (avec une absorption plus élevée et desacides aminés pour l'homme) qui ont été mesurés dans l'œuf avec (35,6 pour cent), le jaune d'œufavec (15,7 pour cent), boeuf avec (15,7 pour cent), poulet avec (17,44 pour cent), saumon avec (22 pour cent)et lait avec (7,99 pour cent) quantité. La lentille et le soja étaient connus pour avoirles sources de protéines, qui contiennent 24,6 % et 51,46 % de protéines,respectivement. En fonction du poids frais de la plante, les protéines végétalesun contenu tel que les épinards contenait 4,01% de protéines, etle concombre, la pomme de terre, le poireau et le brocoli auraient (0,59 %), (2,38 %),(1,5 pour cent) et (4,28 pour cent) quantité de protéines, respectivement.

Comme on le voit, les protéinesla teneur en cet halophyte est inférieure aux ressources biologiques très valoriséesd'animal. De plus, le pourcentage de cette protéine est légèrement inférieur ausources végétales connues telles que les pois, mais il est plus élevé que certaines plantessources.



Tableau 6. Apports nutritionnels de référence (ANREF) : apports nutritionnels recommandésAllocations et apports adéquats en protéines par les aliments et la nutritionConseil, Institut de médecine, Académies nationales


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Si vous avez des questions, veuillez nous envoyer un e-mail : wallence.suen@wecistanche.com

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