Effets de la digestion gastro-intestinale simulée sur l'activité antioxydante et les composants actifs de la poudre de Lycium Ruthenicum et de Cistanche Deserticola et de leur mélange

2.2 Effets de la digestion gastro-intestinale simulée sur les composants actifs et l'activité antioxydante deCistanche désertiquePoudre

2.2.1 Effets de la digestion gastro-intestinale sur les composants actifs deCistanche désertiquePoudre

Comme le montreFigure 3-a, dans le groupe digestion gastrique simulée, la teneur en polyphénols dansCistanche désertiquea augmenté de manière significative au cours de la première heure et demie, puis a diminué (p< 0,05). Dans le groupe de digestion intestinale simulée, la teneur en polyphénols a également augmenté de manière significative au cours de la première demi-heure avant de diminuer (p< 0,05), avec une augmentation ultérieure observée dans les 2 heures.

SelonFigure 3-b, la teneur en polysaccharides dans le groupe de digestion gastro-intestinale simulée a montré une tendance globale à la baisse significative (p< 0,05).

Comme on le voit dansFigure 3-c, la teneur en glycosides phényléthanoïdes a augmenté de manière significative en 2 heures (p< 0,05) dans le groupe digestion gastro-intestinale simulée.

 

 

 

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2.2.2 Corrélation entre les composants actifs et l'activité antioxydante deCistanche désertiquePoudre après digestion in vitro simulée

Comme illustré dansFigure 4-a, dans le groupe de digestion gastrique simulée, le taux de piégeage des radicaux DPPH deCistanche désertiquea augmenté de manière significative au cours de la première heure et demie, puis a diminué (p< 0,05). Dans le groupe de digestion intestinale simulée, le taux d'élimination du DPPH a diminué après 0,5 heure, mais a ensuite augmenté de manière significative (p< 0,05). La diminution de la capacité d'élimination du DPPH dans le groupe intestinal était beaucoup plus prononcée que dans le groupe gastrique, avec une différence statistiquement significative (p< 0,05). Cette tendance est probablement influencée par la dégradation de l'acteoside, qui peut réduire l'activité antioxydante après la digestion gastrique (23).

SelonFigure 4-b, le taux de piégeage des radicaux ABTS dans le groupe de digestion gastro-intestinale simulée a d'abord diminué puis augmenté, indiquant une performance de piégeage généralement bonne.

Tableau 2montre que dans le groupe de digestion gastrique simulée, les polyphénols et les glycosides phényléthanoïdes dansCistanche désertiquea exposé unforte corrélation positiveavec DPPH (p< 0,01), tandis que les polysaccharides présentaient uncorrélation négativeavec DPPH (p< 0,05). Cependant, aucun des composés n’a montré de corrélation significative avec l’ABTS.

Dans legroupe de digestion intestinale simulée, les polyphénols n'ont montré aucune corrélation significative avec le DPPH ou l'ABTS. Les polysaccharides ont montré unforte corrélation négativeavec DPPH (p< 0,01) mais pas de corrélation significative avec l'ABTS. En revanche, les glycosides phényléthanoïdes présentaientcorrélations positives significativesavec DPPH et ABTS (p< 0,05), ce qui est probablement dû à la teneur élevée en glycosides phényléthanoïdesCistanche désertiquepoudre.

Tableau 2 Corrélation entre les teneurs en polyphénols, polysaccharides et glycosides phényléthanoïdes dansCistanche désertiqueet différentes activités antioxydantes

Index / 指标	Groupe suc gastrique simulé		Groupe de liquide intestinal simulé
	DPPH	ABTS	DPPH	ABTS
Polyphénol / 多酚	0.865**	0.218	0.222	0.152
Polysaccharide / 多糖	-0.616*	0.401	-0.643**	-0.478
Glycoside phényléthanoïde / 苯乙醇苷	0.741**	-0.402	0.625*	0.594*

Note:
** indique une corrélation significative (P< 0,05)
*** indique une corrélation extrêmement significative (P< 0,01)

 

2.3.2 Effets de la digestion intestinale simulée sur les composants actifs et l'activité antioxydante duLycium ruthenicumetCistanche désertiquePoudre mélangée

Au cours du processus de digestion intestinale simulée, les changements dans la teneur en polyphénols de la poudre mélangée sont indiqués dansFigure 6-a. Par rapport à 0 h de digestion intestinale simulée (soit 1,5 h de digestion gastrique simulée), la teneur en polyphénols dansGroupe Aaugmenté de manière significative en 1,5 heures (p< 0,05), suivi d'une diminution. DansGroupes BetC, la teneur en polyphénols a augmenté de manière significative en 0,5 heure, puis a progressivement diminué (p< 0,05).

Comme le montreFigure 6-b, la teneur en polysaccharides dans la poudre mélangée a présenté les tendances suivantes :

DansGroupe A, la teneur en polysaccharides a augmenté de manière significative en 2 heures (p< 0,05).

DansGroupe B, le contenu a augmenté de manière significative en 0,5 heure, puis a diminué (p< 0,05).

DansGroupe C, il a augmenté de manière significative en 1 heure avant de diminuer (p< 0,05).

SelonFigure 6-c, la teneur en anthocyanes dans la poudre mélangée a montré des tendances variées :

Groupe Aaffiche une diminution suivie d’une augmentation.

Groupe Ba montré une augmentation significative en 2 heures (p< 0,05).

Groupe Ca présenté une diminution significative en 2 heures (p< 0,05).

Comme le montreFigure 6-d, teneur en glycosides phényléthanoïdes dans les trois groupes (A, B et C) a augmenté de manière significative en 2 heures (p< 0,05).

Les changements dans l'activité antioxydante sont représentés dansFigures 6-e et 6-f. Dans des conditions intestinales simulées :

LeTaux de piégeage des radicaux DPPHdans les trois groupes, a diminué en 0,5 heure, puis a augmenté de manière significative (p< 0,05).

LeTaux de piégeage des radicaux ABTSsignificativement diminué en 2 heures (p< 0,05).

 

3 Discussion

Lors d'une digestion simulée, la diminution des composants actifs deLycium ruthenicumla poudre dans le groupe du liquide intestinal par rapport au groupe du liquide gastrique peut être attribuée à l'instabilité des substances bioactives ou solubles causée par l'activité enzymatique et les changements de pH pendant la digestion [24]. Les changements dans la teneur en polyphénols sont cohérents avec les conclusions de Hu Yidong [25], qui a rapporté des tendances similaires dans la teneur totale en phénols après digestion in vitro de mangue. La tendance observée dans les polysaccharides est également en accord avec l'étude de Chen Guijie [26], qui a étudié les modifications des polysaccharides dansFuzhouthé lors de la digestion in vitro.

Dans le cas dCistanche désertiqueen poudre, la teneur en polyphénols a augmenté de manière significative pendant la phase de digestion gastrique et a diminué pendant la phase intestinale. Cette augmentation peut être due à la génération de certains systèmes enzymatiques au cours de la digestion, qui améliorent la solubilité des polyphénols par le biais de réactions enzymatiques. Cela peut également être dû à des changements dans le pH de l’environnement [27-29], car les polyphénols sont sensibles aux conditions acides et alcalines et peuvent se dégrader en aldéhydes phénoliques ou en d’autres composés, entraînant des fluctuations dans la libération des polyphénols au cours de la digestion gastro-intestinale [30]. La variation de la teneur en polysaccharides pourrait être causée par une dégradation enzymatique au cours de la digestion, qui perturberait la stabilité structurelle des polysaccharides [31], entraînant des modifications des niveaux de substances bioactives.

Cette étude a analysé l'activité antioxydante deLycium ruthenicumetCistanche désertiquepoudre mélangée avant et après la digestion gastro-intestinale. Les résultats montrent qu'au cours de la digestion gastrique, les modifications des anthocyanes et des glycosides phényléthanoïdes étaient cohérentes avec celles deLycium ruthenicumetCistanche désertiquepoudres, respectivement. Cela peut être dû à la sensibilité des composés phénoliques aux variations de pH, qui peuvent conduire à une dégradation des anthocyanes et à une instabilité des glycosides phényléthanoïdes [22, 32]. Au cours de la digestion intestinale, les tendances des polyphénols et des anthocyanes étaient cohérentes avec celles desLycium ruthenicum, tandis que les changements dans les polysaccharides et les glycosides phényléthanoïdes s'alignaient sur ceux deCistanche désertique. Ces changements pourraient être attribués à l'activité enzymatique lors de la digestion, qui perturbe les structures des polysaccharides [31] et des composés phénoliques, formant d'autres dérivés [31, 32].

Au cours de la digestion gastrique, les activités de piégeage des radicaux DPPH et ABTS duLycium ruthenicum–Cistanche désertiqueles poudres mélangées ont été améliorées, maintenant une capacité antioxydante élevée. Cependant, au cours de la digestion intestinale, une diminution de l'activité de piégeage des radicaux DPPH a été observée, potentiellement due à la réduction de l'activité antioxydante de l'échinacoside, le principal glycoside phényléthanoïde présent dansCistanche désertique-après digestion gastrique [23]. Cela suggère que les conditions de pH influencent la capacité antioxydante, les environnements acides favorisant un potentiel antioxydant plus élevé. Il est également possible que les variations de la teneur en composés actifs affectent la capacité antioxydante, car l'hydrolyse dans le système digestif peut produire des métabolites ayant une activité antioxydante plus faible ou plus élevée, entraînant la diminution initiale observée suivie d'une augmentation du taux de récupération du DPPH (33, 34).

L'utilisation de la digestion simulée in vitro dans cette étude reflète, dans une certaine mesure, les changements dans les substances bioactives et la capacité antioxydante desLycium ruthenicumpoudre,Cistanche désertiquepoudre, et leur mélange. Cependant, en raison de l’influence des taux de mélange des échantillons, des enzymes et des conditions de pH, ce système ne simule que la digestion physiologique et ne peut pas reproduire entièrement la digestion humaine. Un modèle de digestion in vitro plus fiable est donc nécessaire. Le bain-marie bouillant de 10 minutes utilisé pour inactiver les enzymes pendant la digestion peut également provoquer la perte ou le lessivage de composés bioactifs, ce qui suggère la nécessité de méthodes plus efficaces pour préserver l'intégrité des composés. De plus, il existe des différences significatives entre la teneur en composants actifs de la poudre brute et leurs formes extraites. Cette étude a utilisé de la poudre brute pour la digestion in vitro afin d'étudier la libération et l'activité antioxydante des composants bioactifs, qui peuvent ne pas refléter pleinement leur valeur nutritionnelle réelle. Les études futures devraient se concentrer sur les composés extraits pour améliorer la précision des données et fournir une base théorique pour évaluer la valeur nutritionnelle desLycium ruthenicum–Cistanche désertiquepoudre.

 

4 Conclusion

La digestion gastrique peut améliorer la solubilité des polyphénols, des polysaccharides, des anthocyanes et des glycosides phényléthanoïdes dansLycium ruthenicumetCistanche désertiquepoudres, améliorant ainsi leur activité de piégeage des radicaux DPPH et ABTS. La digestion intestinale augmente la solubilité des polyphénols et des glycosides phényléthanoïdes mais diminue la teneur en polysaccharides et anthocyanes. Les polyphénols et les anthocyanes présentent de fortes relations linéaires avec les taux de récupération du DPPH et de l'ABTS, tandis que les anthocyanes et les glycosides phényléthanoïdes contribuent de manière plus significative aux effets antioxydants deLycium ruthenicumetCistanche désertiquepoudres.

Lorsque le rapport de mélange deLycium ruthenicumàCistanche désertiqueest de 2:1, l'effet antioxydant est amélioré le plus efficacement. Cela offre une nouvelle perspective pour développer leLycium ruthenicumetCistanche désertiqueindustries du corridor Hexi et pour créer de nouveaux produits alimentaires fonctionnels.