Activité insecticide des extraits de 77 espèces de plantes

Abstrait:Afin d'évaluer l'activité insecticide de 77 espèces de plantes appartenant à 39 familles, la méthode de pulvérisation à disque foliaire, la méthode d'immersion et la méthode de pulvérisation ont été utilisées pour déterminer l'activité insecticide des extraits d'éthanol végétal contre Tetranychus urticae, Frankliniella occidentalis (Pergande) et les avenaes de sitobion, et déterminer l'efficacité de l'efficacité des plantes avec des plantes avec une activité de t., et une activité ultra-usine, et une autre activité d'urgence, et une activité d'urgence, et de plus en plus de l'efficacité des plantes avec des plantes avec une activité de T. et de l'urgence, et de la manière supplémentaire de l'efficacité des plantes avec des plantes avec une activité de T. Urdicine, et de plus en plus de l'efficacité des plantes avec des plantes avec une activité de T. Urdicine, et de plus en plus F. Occidentalis et S. avenae. Les résultats ont montré que l'atropa belladonna L., Sphagneticola Calendulacea, Hypecoum erectum L., Smilaz China L., Hippophae Rhamnoides L., Dianthus chinensis L., Campsis grandiflora et Eupatorium japonicum extraits avaient un toxique élevé sur T. Cinnabarinus, avec la mortalité corrigée de plus que 70% après 72 h; et la valeur LC50 était de 254, 297, 413, 424, 428, 553, 663, 725 mg / ml, respectivement. A. Belladonna L. et S. Calendulacea Les extraits avaient un toxique élevé sur F. occidentalis, avec la mortalité corrigée de plus de 80% après 72 h; et la valeur LC50 était respectivement de 272, 306 mg / ml. S. China, H. erectum, H. Rhamnoides, Incarvillea sinensis Lam., C. grandiflora et E. japonicum extraits avaient un toxique élevé sur F. occidentalis, avec la mortalité corrigée de 70% ration% après 72 h; et la valeur LC50 était de 446, 485, 523, 563, 710, 712 mg / ml, respectivement. Reynoutria japonica houtt., A. Belladonna, Rubus crataegifolius BGE, Kochia Scoparia et Stellera Chamaejasme L. Les extraits avaient un toxique élevé sur S. avenae, avec la mortalité corrigée de plus de 70% après 72 h; et la valeur LC50 était de 281, 336, 540, 657, 730 mg / ml, respectivement. Des plantes telles que A. belladonna, R. japonica, S. calendulacea et S. Chine ont des taux de mortalité corrigés élevés contre différents insectes testés, démontrant une activité insecticide potentielle, qui mérite une étude plus approfondie.

 

Mots-clés:pesticide botanique; Tetranychus urticae;Frankliniella occidentalis; Sitobion avenae; activité insecticide

 

 

 

 

 

Herb Cistanche Matières premières sans pesticides

 

Pesticides botaniquessont des pesticides dérivés de plantes, c'est-à-dire des ingrédients actifs extraits de plantes cultivées artificiellement ou sauvages. Leurs ingrédients actifs ne sont généralement pas des composés uniques, mais certains ou même la plupart de la matière organique dans l'organisme végétal.

 

Les pesticides botaniques sont respectueux de l'environnement, sans danger pour les organismes non cibles, pas faciles à développer une résistance aux médicaments, spécifique dans le mode d'action, favoriser la croissance des cultures, améliorer la résistance aux maladies, ont une grande variété et ont de multiples chemins de développement [1]. Découvrir des composés avec une activité insecticide provenant de plantes et synthétiser de nouveaux pesticides chimiques basés sur eux, ou les développer directement en insecticides botaniques, est l'un des points chauds de la création de nouveaux pesticides [2,3]. Parmi eux, le dépistage et la découverte de ressources végétales avec une activité insecticide est un travail de base important [4-6]. À l'heure actuelle, Sophora Flavescens [7], Veratrum [8], Stemona Radix [9], Caulis Dahliae [10], Tripterygium wilfordii [11], Derris ternata [12], etc. sont toutes des plantes insecticides avec une valeur d'application. Par conséquent, le dépistage et la découverte de ressources avec une activité insecticide des plantes existantes est l'une des directions importantes de la recherche botanique d'insecticide.

Olonisakin et al. [13] ont rapporté les composants volatils et non volatils d'Eupatorium adénophorum de la famille Asteraceae et de son activité insecticide contre le papillon de diamant Plutella xylostella L. et le puceron d'arachide Aphis craccivora koch.; Kanta et al. [14] ont rapporté l'activité insecticide du raifort au gingembre et des gingerols des rhizomes de la famille Zingiberaceae contre la Spodoptera Litura Fabricius; Sampson et al. [15] ont signalé l'activité insecticide des extraits de la famille Euphorbia Jatropha curcas contre le coucou stéphanite pytioides; Fang Tao et al. [16] ont rapporté que les extraits de la famille Solanaceae Datura stramonium et de la famille Apiaceae Radix Pogostemonis ont eu le meilleur effet insecticide contre le puceron du coton PiPhis gossypii Glover; Zhou Kun [17] a rapporté l'activité insecticide des extraits de l'écorce de Melia Azedarach de la famille Meliaceae contre le chrysanthemum Macrosiphoniella Sanborni (Gillette) a le meilleur effet insecticide; Guo Feng et al. [18] ont rapporté que les extraits d'asteraceae plantes Eupatorium adénophorum et Artemisia Annua avaient le meilleur effet insecticide sur Bactrocera dorsalis Hendel. Zhang Jie et al. [19] ont étudié l'histoire du développement des insecticides botaniques dans mon pays et résumé la liste des plantes à activité insecticide. Zhang Xing et al. [2] ont passé en revue les progrès de la recherche des pesticides botaniques et ont souligné que l'activité insecticide des plantes telles que Solanaceae, Meliaceae, Loganaceae, Leguminosae, Asteraceae, Zingiberaceae, LaMiaceae, Asteraceae, Campanulaceae, Apiaceae. Par conséquent, la recherche de plantes insecticides de ces familles ayant une activité insecticide peut fournir des matériaux candidats et une base théorique pour le développement de nouveaux insecticides naturels.

Les principales méthodes d'extraction des ingrédients actifs naturels des plantes comprennent l'extraction à ultrasons, l'extraction assistée par micro-ondes, l'extraction de liquide supercritique, etc. Cependant, en consultant la littérature [20] et en comparant plusieurs méthodes d'extraction, il a été constaté que la technologie d'extraction assistée par micro-ondes nécessite que les plantes extraits ont également une bonne absorption d'eau et pour les systèmes d'extraction liquide, le matériel solvable est également nécessaire pour être un polaire. Alors que la technologie d'extraction du liquide supercritique convient généralement à l'extraction de substances lipophiles et de petites moléculaires, et les matières premières doivent souvent être pré-séchées pendant le processus d'extraction, ce qui ajoute non seulement des coûts supplémentaires, mais provoque également certaines pertes aux huiles composées aromatiques [21]. L'extraction à ultrasons est une technologie qui utilise l'effet mécanique, l'effet de cavitation et l'effet thermique de l'échographie pour améliorer la pénétration du milieu pour favoriser l'extraction. Par rapport aux deux premières technologies, il peut raccourcir efficacement le temps d'extraction, économiser de l'énergie et éviter l'influence de la température élevée sur les composants.

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Par conséquent, cette étude a utilisé une extraction ultrasonique pour préparer des extraits de plantes.
Mon pays est riche en ressources végétales et présente des avantages uniques dans la recherche et le développement de pesticides botaniques. Compte tenu de cette étude, cette étude a pris les avenaes de sape de basseurs de sève (Fabricius), l'acarien Tetranychus urticae à deux points à deux points et les thrips de fleurs occidentales Franklinella occidentalis (Pergande) comme cibles, acheté 77 espèces de plantes de 39 familles, notamment le marché Areguoe, le solanacée, le solanacée, Des tests de toxicité intérieure sur l'activité insecticide de leurs extraits et effectué des tests de toxicité secondaire sur les extraits de plante avec une meilleure activité insecticide, afin de jeter une base pour explorer davantage leur mécanisme insecticide et fournir une base théorique pour le développement de la technologie de la lutte contre les ravageurs verts dans la production agricole.

 

2 résultats et analyse

 

2.1 Détermination de la toxicité intérieure de 77 extraits d'éthanol végétal contre les acariens à deux points

La toxicité de 77 extraits d'éthanol végétal contre les acariens à deux points a été déterminée par la méthode de la pulvérisation du disque foliaire, et les résultats sont présentés dans le tableau 1. Comme le montre le tableau 1, la toxicité des extraits d'éthanol végétale contre les acariens à deux points varie considérablement. Après 24 h de traitement, le taux de mortalité corrigé de Smilax Chine contre les acariens à deux points était le plus élevé, qui était de 71,60%;

Suivi par Solanum Melonena, dont le taux de mortalité corrigé contre les acariens à deux points était de 69,59%; Le taux de mortalité corrigé de Wedelia chrysantha contre les acariens à deux points était de 57,59%; Les taux de mortalité corrigés de Scutellaria baicalensis et Campsis grandiflora contre les acariens à deux points étaient tous deux de 51,17%; Le taux de mortalité corrigé du pharyngium sphaerocephalum contre les acariens à deux points était de 50,84%; Les taux de mortalité corrigés des 71 plantes restants contre les acariens à deux points étaient tous inférieurs à 50%. Après 48 heures de traitement, le taux de mortalité corrigé de Wedelia chrysantha à T. urticae était le plus élevé, à 76,27%; suivi par Smilax China, avec un taux de mortalité corrigé de 74,72%; Solanum belladonna, avec un taux de mortalité corrigé de 70,37%; Hippophae rhamnoides, avec un taux de mortalité corrigé de 64,26%; et pharyngium sphaerocephalum, avec un taux de mortalité corrigé de 62,45%. Les taux de mortalité corrigés des 72 plantes restants à T. urticae étaient tous inférieurs à 60%. Après 72 h de traitement, les taux de mortalité corrigés de Wedelia, Solanum belladonna, Smilax glabra, Herba sphaerocephalae, Dianthus chinensis, Hippophae rhamnoides et Campsis Cymbidium à Tetranychus urticae étaient relativement élevés, qui étaient {29}}. 74,71%, 74,07%, 71,69%, 70,99% et 70,58%, respectivement; Les taux de mortalité corrigés des 69 plantes restants à Tetranychus urticae étaient tous inférieurs à 70%.

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2.2 Détermination de la toxicité intérieure des extraits d'éthanol de 8 plantes à Tetranychus urticae

Les 8 plantes à forte toxicité pour Tetranychus urticae, notamment Solanum belladonna, Wedelia, Herba Sphaerocephalae, Smilax glabrae, Hippophae rhamnoides, Dianthus chinensis, Campsis Cymbidium et Herba sphaerocephalae, ont été utilisées comme matériaux de test pour déterminer leur toxicité pour Tetranychus urticae. The results are shown in Table 2. As shown in Table 2, Solanum belladonna, Wedelia officinalis, Herba Lysimachiae, Smilax glabra, Hippophae rhamnoides, Dianthus chinensis, Campsis creeper, and Cyperus rotundus all showed high insecticidal activity, and the LC50 after treatment for 72 h were 254, 297, 413, 424, 428, 553, 663 et 725 mg / ml, respectivement.

 

Tableau 1 Activité insecticide de 77 extraits d'éthanol de plantes à Tetranychus urticae

Famille	Espèces	Partie testée	Mortalité (%)
			24 h	48 h	72 h
Liliaceae	Smilax China L.	Rhizome	71.60±1.77	74.72±0.95	76.11±1.58
	Polygonatum odoratum	Rhizome	41.52±0.39	43.47±2.58	48.61±2.12
	Asperge cochinchinensis	Racine	23.98±1.17	26.06±2.13	34.11±0.78
	Anemarrhena asphodeloïdes	Tige	25.79±2.60	33.82±3.02	48.15±1.85
	Convallaria Majalis L.	Tout	17.93±2.14	35.28±3.03	39.92±0.82
Polygonaceae	Polygone cuspidatum	Rhizome	34.08±1.27	35.26±2.13	38.68±0.41
	Hydropiper Polygonum L.	Tout	16.75±1.67	24.24±1.06	32.41±0.93
	Reynoutria japonica houtt.	Racine	34.68±2.95	45.51±3.76	56.89±0.80
Meliaceae	Toona Sinensis	Aboyer	32.13±1.52	33.51±1.67	40.74±1.85
Campanulaceae	Platycodon Grandiflorus Lour.	Tout	18.37±2.58	23.51±2.34	33.77±0.44
Moraceae	Morus notabilis schneid	Feuille	29.88±0.06	35.67±1.17	40.12±0.62
Rosacés	Rubus crataegifolius bge.	Tout	17.19±1.40	27.36±1.24	41.98±1.23
	Eriobotrya japonica	Feuille	30.99±1.17	35.28±3.03	39.92±0.82
	Duchesnea indica	Feuille	12.96±3.28	27.36±1.24	44.44±0.00
Lauraceae	Laurus Nobilis L.	Feuille	31.65±2.99	43.03±1.13	45.68±1.23
Ranunculaceae	Paeonia Lactiflora Pall	Racine	16.78±0.99	27.79±1.13	39.66±1.08
	Pulsatilla chinensis	Racine	22.92±1.87	32.07±2.63	33.33±0.00
	Cimicifuga simplex	Rhizome	16.08±0.29	35.28±1.03	37.45±2.18
	Cimicifuga simplex	Rhizome	21.85±1.64	32.18±2.04	52.34±0.95
Loranthaceae	Viscum Coloratum nakai	Tige	9.91±2.66	13.79±1.39	30.09±3.24
	Taxillus Sutchuenensis	Tout	9.12±2.34	18.32±3.64	26.54±0.62
Rubiaceae	Galium aparine L.	Tout	29.60±3.18	41.41±1.65	58.02±2.47
Berberidaceae	Nandina domestica	Tout	17.97±1.22	28.53±1.30	32.92±0.41
Asteraceae	Siegesbeckia orientalis	Tout	30.30±0.48	48.80±1.04	49.23±1.08
	Sphaeranthus calciluensis	Tout	57.59±1.48	76.27±1.52	86.07±1.44
	Eupatorium japonicum	Tout	51.17±2.60	55.50±1.25	71.69±2.76
	Arctium lappa	Tout	11.46±1.38	28.53±1.30	31.48±2.83
	Aster Tataricus L. f.	Tout	17.69±1.23	22.08±0.72	34.39±1.06
Fabaceae	Kummerowia striata	Tout	22.79±3.61	41.94±1.34	44.44±0.00
	Dolichos Lablab L.	Graine	14.97±0.82	16.08±0.29	19.75±1.23
Brassicaceae	Lépidium apetalum	Tout	16.02±2.23	27.36±1.24	34.98±1.65
	Thlaspi Arvense L.	Graine	12.05±0.82	29.14±0.68	32.92±0.41
Caryophyllaceae	Dianthus Chinensis L.	Tout	40.96±0.62	52.22±0.41	74.07±1.85
Thymelaaceae	Stellera Chamaejasme L.	Racine	28.31±2.72	34.38±1.37	40.96±0.34
Gentianaceae	Gentiana macrophylla palm	Racine	29.13±1.46	48.25±0.88	50.67±0.40
	Swertia bimaculata	Tout	24.50±2.78	45.42±1.95	47.27±1.60
Verbenaceae	Callicarpa bodinieri levl	Tout	8.00±1.89	20.57±0.94	38.14±1.99
	Clerodendrum Bungei Steud	Tout	38.09±1.28	49.48±2.11	51.44±1.15

Famille	Espèces	Partie testée	Mortalité (%)
			24 h	48 h	72 h
Apiaceae	Angelica Grayleonis L.	Fruit	21.17±3.14	36.26±1.55	38.89±1.85
	Cicuta virosa L.	Fruit	29.60±3.18	46.98±0.74	49.59±0.74
	Cnidium monnieri (L.) Cuss.	Fruit	32.46±1.34	44.05±0.19	49.23±1.08
Malvaceae	Althaea officinalis L.	Racine	16.02±2.23	27.36±1.24	33.95±0.62
	Hibiscus syriacus L.	Fleur	23.80±0.74	27.18±0.63	30.83±0.67
Bignoniaceae	Campsis Grandiflora	Tout	51.17±0.77	59.26±2.93	70.58±0.90
	Incarvillea Sinensis Lam.	Tout	31.58±1.01	52.14±1.07	68.31±0.82
Euphorbiaceae	Parthénossus tricuspidata	Tout	36.14±2.46	42.24±0.90	48.77±0.62
	Phyrna leptostachya subsp	Tout	28.04±0.93	30.07±0.24	41.98±1.23
	Acalypha australis	Tout	25.26±1.23	29.14±0.68	30.86±2.20
Araceae	Arisaema hétérophyllum	Tubercule	28.65±2.34	35.67±1.17	37.65±2.23
	Acorus tatarinowii	Tout	23.36±2.41	48.66±0.93	51.42±3.51
Cyperaceae	Scirpus yagara ohwi	Tout	16.78±0.99	20.21±0.94	23.92±1.08
Scrophulariaceae	Veronica Polita Fries	Tout	12.05±0.82	15.05±0.74	18.31±0.90
Chenopodiaceae	Kochia Scoparia	Tout	28.71±1.20	33.92±1.55	47.53±1.63
Oxalidacées	Oxalis acetosella L.	Tout	13.80±1.04	20.79±1.24	28.40±2.47
Aristolochiaceae	Saururus Henryi Oliv.	Tout	31.65±2.99	37.40±2.31	42.12±1.17
	Fribauraea revisa Pierre	Tige	30.15±1.26	40.16±0.63	44.44±0.00
Solanaceae	Hyoscyamus Niger L.	Graine	33.89±2.10	42.24±0.00	44.44±2.14
	Solanum Nigrum L.	Tout	28.07±3.65	30.07±0.24	36.37±1.53
	Brugmansia	Tout	69.59±1.67	70.37±2.04	80.86±1.63
Phytolacca	Phytolacca acinosa roxb	Tout	20.19±0.46	30.76±0.6	32.84±1.20
Caesalpiniaceae	Sedum lineare thunb	Racine	13.22±1.52	14.23±1.56	17.28±0.62
Caprifoliaceae	Loninera japonica	Tout	19.42±1.82	25.68±0.45	34.39±1.06
Elaeangaceae	Elaeagnus pungens	Racine	30.99±1.17	33.79±3.96	41.15±1.79
	Hippophae rhamnoides L.	Fruit	45.96±1.07	64.26±0.65	70.99±0.62
Pyrolaceae	Pyrola calliantha	Tout	21.76±0.53	26.12±0.82	28.35±1.34
Apocynacae	Jasminodes trachelospermum	Tige	9.22±0.67	22.67±1.83	24.80±1.93
Celastraceae	Euonymus allatus	Racine	28.31±1.04	43.47±0.91	50.62±1.15
Vitaceae	V. Wilsonae Veitch	Racine	30.99±1.17	34.89±0.78	39.09±0.82
Lamiaceae	Origanum Vulgare L.	Tout	33.85±0.79	36.74±3.92	42.59±1.85
	Leonurus japonicus	Tout	16.78±0.99	23.20±1.60	34.72±1.39
Papaveraceae	Chelidonium Majus L.	Tout	26.22±2.65	31.09±2.37	42.39±2.06
	Hypecoum erectum L.	Tout	50.84±2.23	62.45±0.62	74.71±1.30
	Corydalis yanhusuo wt	Tubercule	19.30±1.75	23.66±1.33	28.84±0.68
Rutaceae	Phellodendron Amurense Rupr	Aboyer	32.46±1.34	36.28±0.61	44.44±0.00
Convolvulaceae	Ipomoea nil roth	Graine	38.06±1.84	48.15±2.40	53.29±1.44
	Ipomoea nil roth	Graine	43.63±3.40	47.56±1.86	61.73±3.27

 

 

2.3 Détermination de la toxicité intérieure de 77 extraits d'éthanol végétal contre les thrips des fleurs occidentales

 

La toxicité de 77 extraits d'éthanol végétal contre les thrips des fleurs occidentales a été déterminée par la méthode d'immersion, et les résultats sont présentés dans le tableau 3. Comme le montre le tableau 3, la toxicité des extraits d'éthanol végétale contre les thrips de fleurs occidentales était très différente. Après 24 heures de traitement, Solanum Belladonna, Smilax China, Wedelia Chrysantha, Pharyngium sphaerocephalum et Scutellaria baicalensis ont montré une activité insecticide élevée, avec des taux de mortalité corrigés contre les thrips de fleurs occidentales de 72,84%, 71,58%, 67,81%, 55. respectivement; Les taux de mortalité corrigés des plantes restantes contre les thrips des fleurs occidentales étaient tous inférieurs à 50%. Après 48 heures de traitement, la mortalité ajustée de Solanum melonena aux thrips des fleurs occidentales était de 80,47%, suivie de Wedelia chrysantha, qui avait une mortalité ajustée de 77,78%, Smilax Glabra, qui avait une mortalité ajustée de 73,68%, et pharyngium sphabra, qui avait une mortalité ajustée de 62.30%. La mortalité ajustée des plantes restantes aux thrips des fleurs occidentales était inférieure à 60%. Après 72 h de traitement, le taux de mortalité corrigé de la belladone aux thrips des fleurs occidentaux était le plus élevé, qui était de 88,10%; suivi par Wedelia chrysantha, qui avait un taux de mortalité corrigé de 85,87%; Les taux de mortalité corrigés de Smilax glabra, Herba strychnifolia, campsis odoratum, Artemisia Hornii, Scutellaria baicalensis et Hippophae rhamnoides aux thrips de fleurs occidentaux étaient entre 70% et 80%, qui étaient 75,63%, 2,64%, 70,94%, 70,89%, 70,81% et 70,34%.

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2.4 Détermination de la toxicité intérieure des extraits d'éthanol de 8 plantes aux thrips des fleurs occidentales

 

Les 8 plantes à forte toxicité pour les thrips des fleurs occidentales, à savoir Belladonna, Wedelia chrysantha, Smilax Glabra, Herba strychnifolia, Hippophae rhamnoides, Artemisia Hornii, Campsis odoratum et Scutellaria baicalensis, ont été utilisées comme matériaux d'essai pour déterminer leur to-odoratum pour les fleurs occidentales. The results are shown in Table 4. As shown in Table 4, Solanum belladonna, Wedelia chrysantha, Smilax glabra, Herba sphaerocephalae, Hippophae rhamnoides, Artemisia hornii, Campsis creeper, and Herba serrata all showed high insecticidal activity, and the LC50 after 72 h of treatment were 272, 306, 446, 485, 523, 563, 710 et 712 mg / ml, respectivement.

 

2.5 Détermination de la toxicité intérieure de 77 extraits d'éthanol végétal contre les avenaes de macrosiphum

La toxicité de 77 extraits d'éthanol végétal contre les avenaes de macrosiphum a été déterminée par méthode de pulvérisation, et les résultats sont présentés dans le tableau 5. Comme le montre le tableau 5, la toxicité de divers extraits d'éthanol végétal contre les avenaes de macrosiphum était très différente. Après 24 heures de traitement, le taux de mortalité corrigée des Aphididae était le plus élevé, qui était de 66,87%, suivi par les Aphididae, qui était de 62,71%. Les taux de mortalité corrigés de Polygonum cuspidatum, Stellera chamaejasme et Kochia scoparia étaient comprises entre 50% et 60%, qui étaient respectivement de 58,40%, 57,96% et 50,33%. Après 48 heures de traitement, Polygonum cuspidatum avait l'activité insecticide la plus élevée, avec un taux de mortalité corrigé de 84,53% contre les Aphididae. Les taux de mortalité corrigés de Stellera chamaejasme, d'Aphididae et d'Aphididae se situaient entre 70% et 80%, qui étaient respectivement de 77,63%, 72,25% et 72,49%. Après 72 heures de traitement, Polygonum cuspidatum avait le taux de mortalité corrigé le plus élevé contre les Aphididae. 86. 67%; Stellera Chamaejasme, Solanum Belladonna, Fructus Scopariae et Fructus Kochiae ont également montré une activité insecticide élevée contre les avenaes des pucerons, avec des taux de mortalité corrigés de 78,02%, 77,65%, 75,96% et 74,93%, respectivement.

 

2.6 Détermination de la toxicité intérieure des extraits d'éthanol de cinq plantes contre

 

Avenae de pucerons cinq plantes à forte toxicité pour les avenae pucerons, à savoir Polygonum cuspidatum, Solanum belladonna, Fructus scopariae, Fructus Scopariae et Stellera chamaejasme, il est indiqué dans le tableau 6. Cuspidatum avait l'activité insecticide la plus élevée contre les avenae pucerons, avec un LC50 de 281 mg / ml; Solanum belladonna, fructus scopariae, fructus scopariae et Stellera chamaejasme avaient également une activité insecticide importante contre les avenaes des pucerons, avec LC50 de 336, 540, 657 et 730 mg / ml, respectivement.